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miR-34a对CIA模型鼠中Treg/Th17平衡的影响及机制研究

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摘 要

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Abstract

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第一章绪论

1.1 miRNA

1.1.1 miRNA概述

1.1.2 miRNA的生物合成与作用机制

1.1.3 miRNA与疾病

1.2.2 NF-κB激活途径

1.2.3 NF-κB与疾病

1.3 Treg/Th17与类风湿性关节炎(RA)

1.3.1 Treg/Th17概述

1.3.2 类风湿性关节炎(RA)

1.3.2.1 类风湿性关节炎概述

1.2.2.2 类风湿性关节炎动物模型研究进展

1.3.3 类风湿性关节炎与Treg/Th17

1.4 本研究的目的、内容、方法、实验设计以及意义

1.4.1 研究目的

1.4.2 研究内容

1.4.3 研究方法

1.4.4 实验方案

1.4.4.1 体外验证miR-34a对Foxp3的调节作用

1.4.5 研究意义

第二章 miR-34a对Foxp3的表达调控

2.1 实验材料

2.1.1 主要试剂、仪器

2.1.2 主要溶液的配制

2.2 实验方法

2.2.1 小鼠淋巴瘤细胞(EL-4)的准备

2.2.2 EL-4细胞转染agomiR-34a和antagomiR-34a

2.2.3 不同炎症微环境培养转染后的EL-4细胞

2.2.4 Immunoblot技术检测Foxp3的蛋白水平

2.3 实验结果

2.3.1 miR-34a的模拟物能够抑制Foxp3的蛋白水平

2.3.2 miR-34a的抑制物能够促进Foxp3蛋白的表达

2.4 小结

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3.1.1 主要试剂、仪器与相关引物

3.1.2 主要溶液的配制

3.1.3 实验动物

3.2 实验方法

3.2.1 Na?ve T细胞的分选及诱导

3.2.2 NF-κB抑制剂对miR-34a的影响以及对Foxp3的调节作用

3.2.3 qPCR检测miR-34a的mRNA水平

3.2.4 Immunoblot技术检测Foxp3的蛋白水平

3.2.5 统计学处理

3.3 实验结果

3.3.1 NF-κB参与CD4+T中IL-6/TNF-α对miR-34a的表达调控

3.3.2 NF-κB抑制剂能够逆转CD4+T中IL-6/TNF-α对Foxp3的抑制作用

3.4 小结

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第四章 miR-34a对CIA模型鼠中Treg/Th17平衡的影响

4.1 实验材料

4.1.1 主要试剂、仪器

Anti-mouse CD4-PE

Anti-mouse CD25-APC

Foxp3/Transcription Factor Staining Buffer Set

4.1.2 主要溶液的配制

4.1.3 实验动物

4.2 实验方法

4.2.1 类风湿性关节炎小鼠模型(CIA)的建立

4.2.2 小鼠模型的分组及处理

4.2.3 小鼠模型的观察指标及肿胀评分标准

4.2.4 影像学检查

4.2.5 模型鼠脾脏以及腘窝、腹股沟、腋窝淋巴结的分离

4.2.6 脾脏细胞和淋巴结细胞的CD4+T细胞的分选

4.2.7 Treg细胞染色

4.2.8 Th17细胞胞内因子染色

4.2.10 统计学处理

4.3 实验结果

4.3.1 miR-34a过表达能够加重CIA模型鼠疾病的严重程度,

4.3.2 小鼠脾脏和淋巴结的Treg/Th17占CD4+T细胞的比例

4.3.3 小鼠关节病理学检查

4.3.4 小鼠关节影像学检查

4.4 小结

第五章

第五章 miR-34a转基因鼠对胶原诱导性关节炎易感性研究

5.1 实验材料

5.1.1 主要试剂、仪器

5.1.2 主要溶液的配制

5.1.3 实验动物

5.2 实验方法

5.2.1 miR-34a转基因小鼠CIA模型的建立及分组

5.2.2 小鼠模型的观察指标及肿胀评分

5.2.3 影像学检查

5.2.4 模型鼠腘窝,腹股沟、腋窝淋巴结以及脾脏的分离

5.2.5 Treg细胞染色

5.2.7 Th17细胞胞内因子染色

5.2.8 HE染色检测小鼠关节病理损伤情况

5.2.9 统计学处理

5.3 实验结果

5.3.1 miR-34a转基因鼠的CIA病情加重

5.3.2 小鼠脾脏和淋巴结的Treg/Th17细胞占全部细胞的比例

5.3.3 小鼠关节病理学检查

5.3.4 小鼠关节影像学检查

5.4 小结

第六章:主要结论及展望

6.1 本课题的主要结论:

6.2 讨论及展望

参考文献

综述:Treg/Th17细胞的平衡与类风湿性关节炎的研究进展

免疫系统是机体识别自我和危险信号从而执行免疫功能的系统,免疫细胞在机体识别“自我”和去除“非我”过程

一.Treg生物学功能

Treg(reguletary T cell,Treg)在免疫应答的负向调控和自身免疫耐受中起着重要

二.Th17生物学功能

Th17细胞因其分泌IL-17细胞因子而得名[8],Th17细胞是最早参与抗感染应答的效应细胞,当外

三.Treg/Th17失衡与RA的发病

Treg与Th17之间的关系是近年来免疫学研究的一大热点,这二者的发现为自身免疫性疾病提供了新的研究

四.Treg/Th17的调节与RA的治疗

综述参考文献

[1]Sakaguchi S, Yamaguchi T, Nomura T, Ono M. Regulat

[2]Liu X, Gao N, Li M, Xu D, Hou Y, Wang Q, et al. El

[3]Nakamura K, Kitani A, Strober W. Cell contact-depe

[4]von Boehmer H. Mechanisms of suppression by suppre

[5]Mellor AL, Munn DH. IDO expression by dendritic ce

[6]Morris GP, Kong YC. Interference with CD4+CD25+ T-

[7]Park H, Li Z, Yang XO, Chang SH, Nurieva R, Wang Y

[8]Bettelli E, Carrier Y, Gao W, Korn T, Strom TB, Ou

[9]Veldhoen M, Hocking RJ, Atkins CJ, Locksley RM, St

[10]Komiyama Y, Nakae S, Matsuki T, Nambu A, Ishigame

[11]Stromnes IM, Goverman JM. Active induction of expe

[12]Yang XO, Pappu BP, Nurieva R, Akimzhanov A, Kang H

[13]Takimoto T, Wakabayashi Y, Sekiya T, Inoue N, Mori

[14]Yamagiwa T, Fukunishi S, Tachibana T, Okamura H, Y

[15]Wang W, Shao S, Jiao Z, Guo M, Xu H, Wang S. The T

[16]Li N, Wang JC, Liang TH, Zhu MH, Wang JY, Fu XL, e

[17]Lubberts E. Th17 cytokines and arthritis[J]. Semin

[18]Passerini L, Rossi Mel E, Sartirana C, Fousteri G,

[19]Taylor PA, Lees CJ, Blazar BR. The infusion of ex

[20]Webster KE, Walters S, Kohler RE, Mrkvan T, Boyman

[21]Battaglia M, Stabilini A, Roncarolo MG. Rapamycin

[22]Moon HG, Kang CS, Choi JP, Choi DS, Choi HI, Choi

[29]Petrillo MG, Ronchetti S, Ricci E, Alunno A, Gerli

致 谢

攻读硕士学位期间发表的文章及参加的会议

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摘要

目的: 本实验室前期的研究发现在SLE患者和RA患者血清中miR-34a表达水平上调,同时证实IL-6/TNF-α可通过NF-κB-miR-34a信号轴调节Th17和调节性T细胞(regulatory T cell,Treg)的平衡。本研究采用体外转染miR-34a的模拟物和抑制剂以及NF-κB抑制剂对NF-κB-miR-34a信号轴进行干预,进一步验证NF-κB、miR-34a、Foxp3(Treg细胞的关键转录因子)这三者之间的关系。应用DBA小鼠建立胶原诱导性关节炎(collagen-induced arthritis, CIA)模型,给予miR-34a模拟物和抑制物处理,观察miR-34a对CIA模型鼠的病程影响,及其对局部Treg/Th17的调节作用。利用miR-34a转基因小鼠(miR-34aTG)建立CIA模型,进一步验证miR-34a对CIA进程和Treg/Th17平衡的影响。 方法: (1)小鼠T淋巴瘤细胞系EL-4细胞于体外分别转染miR-34a模拟物(agomiR-34a)和miR-34a抑制物(antagomiR-34a)36 h,将转染agomiR-34a的EL-4细胞与转化生长因子β(Transforming growth factor-beta,TGF-β)共培养12 h,转染antagomiR-34a的EL-4细胞与TGF-β、IL-6及TNF-α共培养12 h,利用Immunoblot技术检测Foxp3的蛋白表达水平。 (2)免疫磁珠法分选出小鼠脾脏的初始CD4+T细胞(Na?ve CD4+T cells),在诱导iTreg的细胞因子条件下,分别加入IL-6、TNF-α和NF-κB抑制剂(BAY 11-7082 )培养24 h ,利用qPCR技术检测miR-34a的表达水平,通过Immunoblot技术检测Foxp3的蛋白表达水平。 (3)建立DBA小鼠的胶原诱导性关节炎模型,分别于初次免疫后的第28 d、31 d、34 d、37 d和40 d尾静脉注射200μL的agomiR-34a(10 nM)、antagomiR-34a(60 nM)以及对照试剂,观察小鼠的发病情况(小鼠一般情况、临床评分、病理学检查和影像学检查)。利用流式细胞术检测小鼠脾脏及引流淋巴结的Treg/Th17细胞比例情况。 (4)建立C57BL/6背景的miR-34a转基因小鼠的胶原诱导性关节炎模型,将其与正常的野生型C57BL/6进行对比,检测体内各项指标(同(3)),对比两种小鼠对CIA诱导的易感性。 结果: (1)Immunoblot结果显示在TGF-β诱导的Foxp3+EL4细胞中,miR-34a模拟物能够下调Foxp3的蛋白表达水平。而miR-34a抑制物能够上调EL-4细胞中的Foxp3蛋白水平。 (2)将初始CD4+T细胞诱导为iTreg的过程中,加入的IL-6和TNF-α能够上调miR-34a的表达水平,下调Foxp3的表达水平。当使用NF-κB抑制剂阻断其信号通路时,则部分逆转了IL-6/TNF-α对Foxp3的抑制作用,miR-34a的表达水平明显降低。 (3)成功应用DBA小鼠建立CIA模型。空白对照组小鼠未发病,诱导的小鼠在23 d左右发病。agomiR-34a组在第二次注射后炎症程度明显加重,临床评分呈持续上升趋势,最高达11分。antagomiR-34a组的临床评分呈明显的下降趋势,平均在3-4分。影像学和病理学检测与临床得分一致,即CIA-agomiR-34a组的疾病严重程度高于CIA组,注射antagomiR-34a后能够有效缓解关节炎症。流式细胞术分析结果显示CIA的发病严重程度与Treg/Th17 的失衡呈正相关,注射了 antagomiR-34a 后能够部分逆转Treg/Th17的失衡。 (4)采用C57BL/6背景的miR-34a转基因小鼠成功建立CIA模型。两组小鼠的发病时间都在初次免疫后的24 d左右发病。CIA-C57组小鼠的临床评分约为6分。CIA-miR-34aTG组小鼠的临床临床评分高达10分。病理学,影像学等检测结果与上述CIA-agomiR-34a组的趋势一致。 结论: 确定了IL-6/TNF-α可以通过NF-κB-miR-34a信号通路调节Treg细胞的分化发育。在CIA模型中,miR-34a能够通过加剧Treg/Th17的失衡,从而加重关节炎的严重程度,这一结果在miR-34a转基因鼠的CIA模型中也得到了证实。miR-34a抑制物能够部分逆转Treg/Th17的失衡,从而减轻CIA的病情。

著录项

  • 作者

    王晶哲;

  • 作者单位

    江苏大学;

  • 授予单位 江苏大学;
  • 学科 免疫学
  • 授予学位 硕士
  • 导师姓名 邵启祥;
  • 年度 2018
  • 页码
  • 总页数
  • 原文格式 PDF
  • 正文语种 中文
  • 中图分类
  • 关键词

    CIA模型; Treg; 平衡;

  • 入库时间 2022-08-17 10:52:10

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