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日本血吸虫疫苗抗原基因的克隆、表达和应用

摘要

本发明公开了日本血吸虫(Schistosoma japonicum)的抗原基因SjE16和SjP50、其编码蛋白、及重组表达并分离该蛋白的方法,本发明还公开了以抗原SjE16和抗原SjP50蛋白作为日本血吸虫病防治的疫苗。本发明的日本血吸虫抗原SjE16和抗原SjP50蛋白及其疫苗在血吸虫病防治和治疗中拥有广阔的应用前景。

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2009-06-10

    授权

    授权

  • 2007-06-13

    实质审查的生效

    实质审查的生效

  • 2007-04-25

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及生物基因领域,尤其涉及日本血吸虫抗原基因SjE16和SjP50的核酸序列、其编码蛋白;此外,本发明还涉及以日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白为疫苗的应用。

背景技术

目前主要的防治策略是在易感地区大规模化疗及灭螺和健康教育。多年实践证明,反复化疗在疫区能暂时降低发病,但难以阻断传播。同时化疗还存在下列缺点:1)化疗对已造成的组织损害没有修复作用;2)化疗后病人、病畜可反复感染,又需要重复化疗和长期检测,需要昂贵的费用和专门人才;3)已经发现某些虫株对化疗药物吡喹酮产生抗性。国际社会普遍认为:化疗必须与一种具有更长期效果的辅助措施相结合。因此,发展血吸虫疫苗是综合防治血吸虫病的一项具有战略意义的辅助措施。为了推动血吸虫疫苗的研制,世界卫生组织—热带病研究培训特别规划(TDR)将血吸虫疫苗研制置于血吸虫病防治研究的重要地位。包括中国、美国、法国、英国和巴西等国家在内的政府和各研究机构都在积极地开展血吸虫疫苗的研究。

尽管血吸虫疫苗研究难度很大,在短期内很难成功,但前景广阔。几十年来,血吸虫疫苗研究经历了从死疫苗、活疫苗,到基因工程疫苗等现代疫苗的一系列探索过程。自60年代起,包括同种或异种减毒活疫苗免疫取得了明显的保护作用,但由于抗原的来源有限,保存和运输以及安全性等方面的问题,大规模的现场应用受到限制,故目前多朝着分离及鉴定其保护性抗原分子,制备亚单位疫苗的方向努力。随着免疫学研究进展,加强了对血吸虫病保护性免疫、发病机制以及肉芽肿形成调节机制的研究,丰富了血吸虫疫苗研究基础知识,尤其近十几年来现代生物化学及分子生物学在寄生虫领域的广泛应用,使得疫苗候选分子的鉴定、基因克隆及表达等方面得到迅速发展。血吸虫病疫苗研究与发展可划分为四个阶段:保护性抗原的鉴定、候选疫苗抗原的临床前研究、疫苗抗原的临床前研究、抗原工业化生产。

迄今已鉴定的血吸虫抗原分子超过100种,动物试验保护性一般在30%-50%。其中已克隆表达的重组疫苗候选分子有20种以上,来源于血吸虫尾蚴、童虫、成虫、卵等各阶段,按其性质划分,包括(1)表面相关抗原:22kDa,23kDa,25kDa,50kDa等表膜相关分子;(2)结构蛋白:副肌球蛋白,肌球蛋白,原肌球蛋白,α-微管蛋白;(3)酶:谷胱苷肽S-转移酶(GST26/28kDa)、苹果酸脱氢酶、谷胱苷肽过氧化物酶,糖酵解酶(TPI,GAPDH,醛缩酶,烯醇化酶)、蛋白酶(血红蛋白酶,胰肽酶);(4)生理蛋白:脂肪酸结合蛋白、钙结合蛋白、钙网蛋白和热激蛋白。TDR根据血吸虫抗原分子-纯化和重组蛋白的保护水平、诱导效应、体内的分布及生理功能等多个因素,确定了6个优先发展的的曼氏血吸虫候选分子:谷胱苷肽S-转移酶(GST)、副肌球蛋白(Sm97)、辐射疫苗5号抗原(IrV-5)、磷酸丙糖异构酶(TPI)、23kDa膜抗原(Sm23)、脂肪酸结合蛋白(Sm14)。此外,其它针对血吸虫独特生理和病理特性的新型疫苗也在探讨之中,包括抗合抱疫苗、抗独特性疫苗、抗升值疫苗、抗胚胎疫苗、抗免疫病理疫苗。

我国血吸虫疫苗研究工作起步较晚,自1986年日本血吸虫基因工程疫苗纳入国家863高科技计划的范畴时,才开始起步。1986-1994年为基础研究准备阶段,主要是通过引进国外曼氏血吸虫疫苗研究的技术及成果进行日本血吸虫大陆株的比较研究,如开展日本血吸虫大陆株26-28kDa的抗原性、免疫原性及免疫机制的研究,成虫cDNA基因文库的构建与基因克隆、免疫筛选,Sj26kDa的重组、重组GST蛋白免疫小鼠的保护性研究,这些研究为我国进一步进行日本血吸虫疫苗的研究打下了一定的基础。

我国研究报道的日本血吸虫(大陆株)候选抗原分子已超过30个。在曼氏血吸虫或日本血吸虫菲律宾株中被公认为有希望的GST等10多个亚单位候选抗原,已全部在日本血吸虫中国大陆株中获得了克隆和表达,部分进行了动物试验。Sj26GST重组抗原免疫兔、牛后,特异性抗GST抗体至少可持续56周;Sj28GST、Sj23和Sj97kDa在家蚕真核细胞核幼虫表达后,用于免疫如绵羊、黄牛和水牛等大动物,再用尾蚴攻击感染,多数获得了明显的减虫和减卵的效果。Sj22.6、Sj62、SjTPI、Sj26等均已获得基因克隆,并分别在原核或真核细胞内表达。多价疫苗、核酸疫苗和合成肽疫苗也都在国内不同实验室内进行尝试。

但事实上,由于血吸虫能以多种方式逃避宿主的免疫攻击,包括模拟宿主抗原、抑制宿主免疫反应、虫体表面抗原的改变或丧失表达等,血吸虫病疫苗往往有诱导保护力或宿主保护性应答降低,甚至完全无效等问题。由于日本血吸虫与曼氏血吸虫在生物学特征上有较大的差异,流行区人群对人本血吸虫病人的保护免疫力要低弱,在持续时间上更短暂。在曼氏血吸虫病中有希望的疫苗候选分子并未对日本血吸虫大陆株获得预期的保护力。迄今为止,我们还未获得具有实用价值的血吸虫疫苗。因此,制备有效的血吸虫疫苗,特别是日本血吸虫疫苗无疑面临着巨大的挑战,需要长期深入的研究。

我国日本血吸虫病属人畜共患病,根据我们最近历时4年的现场研究—数学模式分析的结果表明,80%的血吸虫病传播是来自耕牛,牛是血吸虫病的重要保虫宿主和传染原因。在目前研究人用疫苗难度较大的情况下,首先从兽用疫苗研究突破具有实际意义。发现潜在的疫苗靶点,进一步开发牛用疫苗是我们目前血吸虫疫苗研究的重点。牛用疫苗与其它措施相结合,将可为有效控制血吸虫病提供新的途径。

Sj16与曼氏血吸虫的SME16基因具有较高的同源性。SME16被认为是虫卵阶段特异的钙结合蛋白,但其在虫卵中的功能尚不清楚。1992年Moser在体外重组表达了曼氏血吸虫虫卵中的一种钙结合蛋白Sm6(SME16),该蛋白可为免疫兔血清识别,被认为是一种具潜力的诊断抗原。其后Rao的研究发现Sm16具有抗感染的作用,是一种免疫调节蛋白在血吸虫的免疫逃避中起着重要作用,重组表达的Sm16具有强烈的免疫活性可为多克隆的免疫兔血清所识别。值得注意的是,钙结合蛋白是一类重要的参与调节细胞活动的蛋白家族,该类蛋白与靶蛋白结合后可使后者发生构象改变,从而激发一系列生物学反应,如肌肉收缩、神经递质释放、酶激活和细胞生长等[Silva AC,Reinach FC.Calcium binding induces conformational changes in muscleregulatory proteins.Trends Biochem Sci 1991;16(2):53-7]。鉴于SME16在虫卵中的高表达和钙结合蛋白的重要生理功能,有理由认为,SME16在调节虫卵细胞活动过程中必然发挥着重要而独特的作用。有意思的是SME16与童虫、成虫特异的钙结合蛋白sm20[Avercroft JC,Huggins MC,Dunne DW,et al.Characterisation of Sm20,a 20-kilodalton calcium-binding protein of Schistosoma manoni.Mol BiochemParasitol 1990;38(2):211-9]以及尾蚴特异的8-KDa钙结合蛋白[Am D,Grossman Z,Markovics A,et al.Rapid changes in the expression of a gene encoding a calciumbinding protein in Schistosoma mansoni.Mol Biochem Parasitol1989;34(2):167-75]除了具有相似的钙结合位点外,相互之间并不具有明显的同源性。

免疫素(Immunophilin)是免疫抑制剂环孢菌素A(CsA)的受体,属FK506结合蛋白(FKBP)超家族,与热休克结合免疫素p59等结构相似。其具有肽基脯氨酸顺反异构酶(PPIase)活性,是蛋白折叠中重要的伴侣分子,并可与多种胞内受体蛋白结合。存在于血吸虫体内的免疫素可与人体内FKBP12相互作用,在血吸虫感染中起重要作用。

由于Sjp50和Smp50在核苷酸水平氨基酸水平上的一致性达到了71%,可认为他们很可能也具有相似的功能。Smp50的研究显示P50属FK506结合蛋白(免疫素)超家族,与热休克结合免疫素P59等结构相似,具有PPIase活性,可帮助血吸虫体内的蛋白组装和蛋白折叠,而且能够与热休克蛋白90相互作用,一起构成类固醇激素受体复合物的成分。已知宿主的激素对血吸虫的生长发育有调节作用,但到目前为止,人们尚未直接证据表明血吸虫体内有类固醇激素受体存在。而Sjp50和Smp50的存在可能对验证类固醇受体提供一些支持。以前的研究显示,P50可以被曼氏血吸虫可溶性抽提物以及表皮抽提物所识别,说明Smp50可能存在于表皮,且抗P50的抗血清不能识别Hela细胞和大肠杆菌的抽提物,说明来源于不同物种的FKBP虽然在一般结构上有许多相似性,但在全部结构以及序列上的差异足以产生不同的抗体反应。

在本发明之前,还没有出现涉及本发明的新日本血吸虫疫苗的公开报道。

发明内容

本发明要解决的技术问题之一是提供新的日本血吸虫抗原基因SjE16和SjP50,其分别编码抗原SjE16和SjP50蛋白。

本发明要解决的技术问题之二是提供一种制备日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白的方法。

本发明要解决的技术问题之三是提供一种日本血吸虫病防治疫苗,该疫苗分别以日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白为目的抗原。

本发明要解决的技术问题之四是提供日本血吸虫病防治疫苗在制备预防和治疗日本血吸虫病的药物中的应用。

为了解决上述技术问题,本发明通过如下技术方案实现:

在本发明的一个方面,提供了两种分离出的DNA分子,该分子分别包括:编码具有SEQ ID NO:1中1-435的核苷酸序列;编码具有SEQ ID NO:3中12-1286的核苷酸序列;所述的SEQ ID NO:1中1-435的核苷酸序列编码具有SEQ ID NO.2所示序列的蛋白,所述的SEQ ID NO:3中12-1286的核苷酸序列编码具有SEQ ID NO.4所示的蛋白。

在本发明的另一方面,提供了两种分离出的日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白,它们分别包括:具有SEQ ID NO.2所示氨基酸序列的蛋白、或由该蛋白发生一个或多个氨基酸的置换、缺失或插入而形成的具有针对日本血吸虫免疫原性的蛋白,较佳地,该蛋白是具有SEQ ID NO.2序列的蛋白;具有SEQ ID NO.4所示氨基酸序列的蛋白、或由该蛋白发生一个或多个氨基酸的置换、缺失或插入而形成的具有针对日本血吸虫免疫原性的蛋白,较佳地,该蛋白是具有SEQ ID NO.4序列的蛋白。

在本发明的另一方面,还提供了一种载体,它包含上述的DNA分子。

在本发明的另一方面,还提供了一种用上述载体转化的宿主细胞。在实施例中该宿主细胞是大肠杆菌。

在本发明的另一方面,还提供了一种日本血吸虫抗原蛋白的基因工程制备方法,该方法包括:

(1)在表达条件下,培养转入表达载体的宿主细胞;

(2)从培养物中分离出含SEQ ID NO.2或SEQ ID NO.4所示氨基酸序列的蛋白。

在本发明中,“分离的”DNA是指,该DNA或片段已从天然状态下位于其两侧的序列中分离出来,还指该DNA或片段已经与天然状态下伴随核酸的组份分开,而且已经与在细胞中伴随其的蛋白质分开。

在本发明中,可选用本领域已知的各种载体,如市售的载体,包括质粒,粘粒等。在生产本发明的日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白时,可以将SjE16和SjP50蛋白的编码序列分别可操作地连于表达调控序列,从而形成SjE16或SjP50蛋白表达载体。

在本发明中,“可操作地连于”指这样一种状况,即线性DNA序列的某些部分能够影响同一线性DNA序列其他部分的活性。例如,如果信号肽DNA作为前体表达并参与多肽的分泌,那么信号肽(分泌前导序列)DNA就是可操作地连于多肽DNA;如果启动子控制序列的转录,那么它是可操作地连于编码序列;如果核糖体结合位点被置于能使其翻译的位置时,那么它是可操作地连于编码序列。一般,“可操作地连于”意味着相邻,而对于分泌前导序列则意味着在阅读框中相邻。

在本发明中,术语“宿主细胞”包括原核细胞和真核细胞。常用的原核宿主细胞的例子包括大肠杆菌、枯草杆菌等。常用的真核宿主细胞包括酵母细胞、昆虫细胞和哺乳动物细胞。较佳地,该宿主细胞是真核细胞,如CHO细胞、COS细胞等。

本发明还提供了分别以日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白为目的抗原,通过基因工程制备方法获得的疫苗。

此外,本发明还提供了日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白的疫苗在制备预防和治疗日本血吸虫病的药物中的应用。

本发明的日本血吸虫抗原SjE16和SjP50蛋白的疫苗在血吸虫病防治和治疗中有着重要的作用。尤其是当SjE16和SjP50抗原联合免疫小鼠时,两个抗原有协同作用,使小鼠体内的日本血吸虫成虫数大幅下降,肝脏内虫卵数也下降,这一效果明显优于SjE16或SjP50抗原单独免疫小鼠所产生的效果。

附图说明

图1是本发明的重组质粒pGEX4T-1-SjP50和pGEX4T-1-SjE16表达产物;

图2是本发明的酶切前后的SjP50和SjE16蛋白;

图3是本发明的RT-PCR实验鉴定SjE16、SjP50在日本血吸虫发育各阶段的转录表达图;

图4是本发明的抗原SjE16和抗原SjP50联合免疫诱导血吸虫特异抗原细胞免疫反应柱状图;

图5是本发明的抗原SjE16和抗原SjP50联合免疫可诱导宿主对金黄色葡萄球菌抗原(SEB)刺激无反应的图;

图6是本发明的日本血吸虫感染或抗原SjE16和抗原SjP50联合免疫引起宿主对凝集素(ConA)刺激无反应的柱状图。

具体实施方式

下面结合附图和实施例对本发明作进一步详细的说明。

以下实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,例如Sambrook等人,分子克隆:实验室手册(New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。

实施例1

日本血吸虫抗原SjE16和抗原SjP50基因的获得。

1.引物的设计和合成

根据Sj50基因与Sj16基因序列,经Primerexpress软件分析设计引物,由上海申友生物生物工程公司合成二对引物。

Sj50-F为5’CCGGAATTCATGTCGGAGACGCCAAAGC3’(SEQ ID NO:5),引入EcoR I酶切位点GAATTC;

Sj50-R为5’CCGCTCGAGCAGAATTAAGCTCTCACAGGGCA3’(SEQ ID NO:6);引入Xho I酶切位点CTCGAG;

引物Sj16-F为5’CCGGAATTCCTTCATCTCAGAATAATGTCGGA3’(SEQ ID NO:7),引入EcoR I酶切位点GAATTC;

Sj16-R为5’CCGCTCGAGCATACGTTTGACGTACATAAGCT3’(SEQ ID NO:8),引入Xho I酶切位点CTCGAG。

引物贮存浓度50mM、工作浓度为10mM。

2.Sj50基因、Sj16基因的PCR扩增

以用常规方法制备的日本血吸虫成虫及虫卵cDNA为模板,进行PCR扩增。反应体系共计50μl,其中模板1.5μl、5’引物2μl、3’引物2μl、dNTP2.5μl、10×Pfu缓冲液5μl、Pfu DNA多聚酶0.5μl、去离子水36.5μl。反应条件为预变性95℃ 5min;变性94℃ 1min;退火56℃ 1min;复性72℃ 2min;循环30次,最后一个循环复性再延长8min后,样后存于4℃。PCR产物用QIAquick PCRPurification kit回收纯化。

结果:1%琼脂糖凝胶电泳显示Sj50基因PCR扩增产物有一条带大小约1.1Kb与预计相同。Sj16基因PCR扩增产物有一条清晰的条带大小约440bp与理论扩增大小相符。

对PCR产物进行测序,结果表明,Sj16基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示,编码一个全长为145aa的蛋白(SEQ ID NO:2)。Sj50基因的核苷酸序列如SEQ ID NO:3,其ORF位于12-1286位,编码一个全长为425aa的蛋白(SEQ ID NO:4)。

实施例2

日本血吸虫抗原SjE16和抗原SjP50基因的克隆表达。

1.表达载体的构建

回收纯化的Sj50基因、Sj16基因和质粒pGEX4T-1分别用限制性内切酶EcoR I和Xho I进行酶切。10μl模板加EcoR I 1μl、Xho I 1μl、EcoR I buffer 1.5μl、BSA 0.5μl和去离子水1μl,共计15μl于1.5ml Eppendorf管中37℃水浴过夜。

酶切后的Sj50基因、Sj16基因和质粒pGEX4T-1,用QIAquick PCR Purificationkit回收纯化。纯化的目的基因片段和载体酶切片段,测定OD值,计算片段和载体片段浓度,目的片段和载体片段按3∶1摩尔比进行连接。连接体系中含T4 DNA连接酶1μl、10×连接缓冲液1μl、去离子水、pGEX4T-1(80ng)、Sj50基因(60ng)或Sj16基因(20ng),共计10μl于1.5ml Eppendorf管中12℃-14℃连接过夜,构建成Sj50基因、Sj16基因表核表达重组质粒pGEX4T-1-Sj50和pGEX4T-1-Sj16。

结果:经限制性内切酶EcoR I和Xho I酶切后的Sj50基因、Sj16基因分别和质粒pGEX4T-1连接,构建成重组质粒pGEX4T-1-Sj50和pGEX4T-1-Sj16,转化入大肠杆菌DH5α内扩增。以扩增细菌为模板,GST-5’、GST-3’为引物进行PCR扩增所获条带与目标条带大小一致。

2.表达载体的鉴定

通过电转将重组质粒pGEX4T-1-Sj50和pGEX4T-1-Sj16分别转化大肠杆菌DH5α感受态细胞。1μl连接产物转化50μl感受态细胞,电压2KV,电容25μF,电阻300Ω,转化时间5.43mS。转化后的菌体加入1ml LB培养液,37℃,250rpm振荡培养1hr后,涂布于含氨苄青霉素的LB琼脂平板上,培养皿倒置于37℃培养过夜。

随机挑取上述平板上的菌落进行PCR鉴定。反应体系共计10μl,内含模板3μl、GST-5’引物0.25μl、GST-3’引物0.25μl、dNTP 0.4μl、10×Pfu buffer 1μl、Tag DNA聚合酶0.1μl、去离子水5μl。反应条件为预变性94℃ 3min;变性94℃ 1min;退火56℃ 1min;复性72℃ 1.5min;循环30次,最后一个循环复性再延长8min后,样后存于4℃。PCR产物经1%琼脂糖电泳检测。

随机挑取Sj50和Sj16阳性克隆分别加入含100μg/ml氨苄青霉素的2XYT液体培养基5ml,37℃ 300rpm扩增培养过夜。用Mini-MTM Plasmid DNA ExtractionSystem抽提并纯化质粒。对所抽质粒进行EcoR I和Xho I酶切鉴定。

结果:用Mini-MTM Plasmid DNA Extraction System从大肠杆菌中抽提并纯化质粒。对所抽质粒进行EcoR I和Xho I酶切鉴定。结果显示各有二条明显的条带(质粒与目的基因)。

3.Sj16和Sj50重组基因在大肠杆菌中的表达

通过钙转法将以上抽提的pGEX4T-1-Sj50和pGEX4T-1-Sj16重组质粒转化入大肠杆菌BL21。内含50μl BL21钙转感受肽细胞的1.5ml Eppendorf管中加入重组质粒2μl,冰浴30min后,37℃热休克5min,立即冰浴2min。每管加入预温至37℃的LB培液,37℃ 300rpm培养1hr后,取100μl涂布于含100μg/ml氨苄青霉素的LB琼脂平板上,培养皿倒置于37℃培养过夜。

随机挑取Sj16和Sj50阳性克隆接种于3ml含100μg/ml苄青霉素的2XYT液体培养基,37℃摇至OD600=0.6。取2ml加入IPTG至终浓度1mM,1ml不加诱导物作为对照,28℃ 250rpm,培养4hour。4℃ 4000g离心10min沉淀菌体。诱导管每管加入100μl PBS,对照管每管加入50μl PBS。每管取出15μl菌体加入3μl 6×SDS-PAGE样品缓冲液2μl作SDS-PAGE电泳,浓缩胶4%,分离胶12%。电泳条件:浓缩胶80V,分离胶100V。电泳结束胶于考氏亮蓝R250染液中固定、染色,在乙醇-冰醋酸液中脱色。

结果:pGEX4T-1-Sj50和pGEX4T-1-Sj16转化的大肠杆菌BL21经IPTG诱导后,较诱导前各出现一分子量约为80kDa和40kDa的条带,即为Sj50基因产物与谷胱甘肽巯基转移酶(GST)的融合体、Sj16基因产物与GST的融合体(图1)。

应用抗GST抗体,通过亲和层析,纯化GST-SjP50和GST-SjE16蛋白。用凝血酶(thrombin)酶切GST连接的蛋白。12%SDS-PAGE胶分析。结果如图2所示:1、GST-SjP50融合蛋白;2、酶切不完全GST-SjP50融合蛋白;3、酶切后的GST-SjP50融合蛋白;4、GST-SjE16融合蛋白;5、酶切不完全GST-SjE16融合蛋白;6、酶切后的GST-SjE16融合蛋白。

然后,分别用抗SjP50和SjE16抗体通过亲和层析,纯化SjP50和SjE16蛋白以取得纯化蛋白抗原。

实施例3

RT-PCR鉴定SjE16、SjP50在日本血吸虫发育各阶段的转录表达情况。

1.样品准备

准备日本血吸虫的卵、尾蚴、雄虫、雌虫,以抽提其RNA。

2.总RNA抽提试剂盒

抽提RNA试剂采用TRIzol reagent(GIBCO/BRL),该试剂基于酸性酚一步抽提法生产。用于抽提RNA所用器皿和水均要进行无RNA酶处理,以保证实验中无RNA酶环境。

3.RNA抽提步骤

将碾杵和匀浆器等器皿在200℃干烤4h,去除RNA酶,冷却;加入液氮中预冷,将组织从液氮中迅速取出,碾成粉末;用刮匙将组织放入预先加入TRIzol试剂匀浆器中,匀浆数分钟;将匀浆后液体转入无RNA酶离管中,加入氯仿后,4℃离分层;将上层水相转入一无RNA酶离管中,加入氯仿后,4℃离分层;将上层水相转入一无RNA酶离管中,加异丙醇,4℃离沉淀RNA;用75%乙醇洗涤沉淀2次;用无RNA酶去离子水溶解沉淀。抽提RNA质量鉴定:紫外分光光度计测定260/20比值(比值均在1.7~2.0);并在MOPS甲醛变性胶中观察有无降解。

4.cDNA合成

取总RNA2μg,OligodT16 1μL,70℃保温3min,立即冰上变性5min。加入5×buffer,DTT和50mg/LdNTP各2μL及1μL逆转录酶,充分混匀后,42℃2h。模板使用终浓度通常为1μg/100μL。

以β-actin作内对照,PCR反应混合物中各成分为:β-actin、Sj50-F、Sj50-R、Sj16-F、Sj16-R、10×Buffer、MgCl2、dNTP、Taq DNA聚合酶、cDNA模板分别为0.2、0.2、0.4、0.4、1.0、1.0、0.2、0.1和5μLcDNA模板,最后补充ddH2O使反应体系为10μL。PCR反应条件94℃变性5min;然后每个循环94℃ 30s、53℃ 30s、72℃ 30s,共30个循环;最后72℃延伸7min。

实验结果显示,SjE16仅在日本血吸虫的虫卵中表达,而SjP50在雄虫、雌虫中表达(图3)。

实施例4

抗日本血吸虫感染保护性实验。

该实施例的动物实验方法步骤如下:

1.抗原免疫动物

动物:C57小鼠,6-8星期。

免疫次数和部位:3次免疫(2周/次间隔),背部皮下多点。

免疫剂量:福氏佐剂(Freund’s Complete Adjuvant)100ul/只

SjE16/福氏佐剂(Freund’s Complete Adjuvant)100ul/只

SjP50/福氏佐剂(Freund’s Complete Adjuvant)100ul/只

SjE16+SjP50/福氏佐剂(Freund’s Complete Adjuvant)100ul/只。

2.血吸虫感染小鼠

攻击感染时间:第三次免疫7天进行日本血吸虫尾蚴攻击感染,另外一组动物体外细胞免疫实验。

腹部皮肤感染:40±2尾蚴/小鼠。

血吸虫鉴定:42天解剖小鼠,收集肝门静脉和肠系膜静脉处成虫并计数。

血吸虫虫卵鉴定:肝脏称重后剪碎,5%KOH消化过夜,并计数。

体外细胞免疫实验:取小鼠脾脏,分离脾脏单个核细胞,备用。

3.细胞免疫实验

细胞培养:小鼠(n=4)脾脏细胞。5×105细胞/ml/RPMI 1640/10%FCS

血吸虫抗原:抗原SjE16 100ng/ml,抗原SjP50 100ng/ml,

细菌抗原:金黄色葡萄球菌enterotoxin B(SFB)100,30,10,3ng/ml,

凝血素:ConA 0.1ug/ml,

细胞培养条件:37CO,5%CO2,72小时。

细胞增殖反应测定:(3H)Thymidine DNA参入,培养6小时。Beta-液闪计数。

日本血吸虫抗原SjE16、抗原SjP50免疫小鼠,激发宿主抗日本血吸虫感染免疫反应,实验结果表明(见表1):

1.SjE16抗原免疫小鼠,可以一定程度激发宿主抗血吸虫免疫反应,但是,仅仅小鼠体内的成虫数有所下降,而肝脏内虫卵数下降不多。

2.SjP50抗原免疫小鼠,可以激发一定程度的宿主抗血吸虫免疫反应,小鼠体内的成虫数有所下降,肝脏内虫卵数也有下降。

3.SjE16、SjP50抗原联合免疫小鼠,两个抗原有协同作用,小鼠体内的成虫数大幅下降,肝脏内虫卵数下降。

4.SjE16、SjP50单独和联合免疫小鼠,粪便虫卵数有显著下降。

表1.SjE16和SjP50抗原激发宿主抗日本血吸虫免疫反应

    组别  动物数  成虫数  减虫率  虫卵数/克   肝脏   减卵率    空白    佐剂    SjP50    SjE16    SjP50+    SjE16  4  6  6  6  6  30.5±6.2  28.3±4.5  19.8±3.5  17.8±5.8  9.7±3.6  30%  37%  65%  16.2±5.5  14.3±4.7  9.2±4.2  12.1±6.2  8.8±4.6  35.40%  14.90%  38.70%

实施例5

该实施例的动物实验方法同实施例4所述的步骤,将抗原SjE16、抗原SjP50联合免疫,可以诱导宿主对非血吸虫抗原刺激无反应(Anergy),而两个抗原分别免疫,不能诱导这一反应。抗原SjE16和抗原SjP50联合免疫,可诱导血吸虫特异抗原细胞免疫反应(见图4),同时,抗原SjE16和抗原SjP50联合免疫,可以诱导宿主对金黄色葡萄球菌抗原(SEB)刺激无反应(图5),且日本血吸虫感染或抗原SjE16和抗原SjP50联合免疫能引起宿主对凝集素(ConA)的刺激无反应(图6)。

序列表

<110>上海人类基因组研究中心

<120>日本血吸虫抗原基因的克隆、表达和疫苗

<130>NP-10013

<160>4

<210>1

<211>438

<212>DNA

<213>日本血吸虫(Schistosoma japonicum)

<220>

<221>CDS

<223>(1)..(435)

<400>1

atg tcg gat gaa aac cga tgg att gca gtt ttt aat tca cta gat aaa       48

Met Ser Asp Glu Asn Arg Trp Ile Ala Val Phe Asn Ser Leu Asp Lys

1               5                   10                  15

gat gga aat aag tta tta aca cgt gat gaa att gag caa tgc ttg aaa       96

Asp Gly Asn Lys Leu Leu Thr Arg Asp Glu Ile Glu Gln Cys Leu Lys

            20                  25                  30

agt ctt ggc gtt tct gaa agt ttt gcc gaa aag ata atc aag gaa act      144

Ser Leu Gly Val Ser Glu Ser Phe Ala Glu Lys Ile Ile Lys Glu Thr

        35                  40                  45

gac ttg aat aaa gat gga aaa atc tct ttg gat gaa tac ctg aaa gca      192

Asp Leu Asn Lys Asp Gly Lys Ile Ser Leu Asp Glu Tyr Leu Lys Ala

    50                  55                  60

cta aga aaa atc cct cca cgt gac aaa tgt tca agt gtt gaa cgt tgg      240

Leu Arg Lys Ile Pro Pro Arg Asp Lys Cys Ser Ser Val Glu Arg Trp

65                  70                     75                  80

aaa gaa gta ttt caa tcc ata gat aaa gat aat tca ggc aaa gtt tct      288

Lys Glu Val Phe Gln Ser Ile Asp Lys Asp Asn Ser Gly Lys Val Ser

                85                  90                  95

gct aaa gaa ctg gac gaa ttt ttg aaa tca act ggt aat gat ata aac      336

Ala Lys Glu Leu Asp Glu Phe Leu Lys Ser Thr Gly Asn Asp Ile Asn

            100                 105                 110

aaa agc tgt ttg gaa aat tgg atg gct aca aat gac aaa aac aag gat      384

Lys Ser Cys Leu Glu Asn Trp Met Ala Thr Asn Asp Lys Asn Lys Asp

        115                 120                 125

ggt gaa cta gat tat gcc gaa ttt tta gct tat gta cgt caa acg tat      432

Gly Glu Leu Asp Tyr Ala Glu Phe Leu Ala Tyr Val Arg Gln Thr Tyr

    130                 135                 140

gaa taa                                                              438

Glu

145

<210>2

<211>145

<212>PRT

<213>日本血吸虫 (Schistosoma japonicum)

<400>2

MSDENRWIAV FNSLDKDGNK LLTRDEIEQC LKSLGVSESF AEKIIKETDL     50

NKDGKISLDE YLKALRKIPP RDKCSSVERW KEVFQSIDKD NSGKVSAKEL     100

DEFLKSTGND INKSCLENWM ATNDKNKDGE LDYAEFLAYV RQTYE          145

<210>3

<211>1413

<212>DNA

<213>日本血吸虫(Schistosoma japonicum)

<220>

<221>CDS

<223>(12)..(1286)

<400>3

acgcagttga c atg tcg gag acg cca aag cag tct gaa gag gaa tat cta      50

             Met Ser Glu Thr Pro Lys Gln Ser Glu Glu Glu Tyr Leu

              1               5                   10

aaa gat ttc ata gac tta agc cca tct ggt gat cgt ggt att ctc aag       98

Lys Asp Phe Ile Asp Leu Ser Pro Ser Gly Asp Arg Gly Ile Leu Lys

     15                  20                  25

aaa gta gta cga gaa ggc tac tcg gac atc aaa cca tgc gat ggt gac      146

Lys Val Val Arg Glu Gly Tyr Ser Asp Ile Lys Pro Cys Asp Gly Asp

 30                  35                  40                  45

acg gtc ata gta cat tat gtc ggt act aac ttc ggt ggt gaa aag cat      194

Thr Val Ile Val His Tyr Val Gly Thr Asn Phe Gly Gly Glu Lys His

                50                  55                  60

ggt gaa gta ttc gac tca agc aga gcc cga aat gaa aag ttt gaa ttt      242

Gly Glu Val Phe Asp Ser Ser Arg Ala Arg Asn Glu Lys Phe Glu Phe

            65                  70                  75

aca att ggg aaa ggt agt gta att aaa gct tgg gat atc ggt gtt gca      290

Thr Ile Gly Lys Gly Ser Val Ile Lys Ala Trp Asp Ile Gly Val Ala

        80                  85                  90

act atg agg ttg gga gaa gtt tgt gaa ttg atc gcg tcg cct gaa tat      338

Thr Met Arg Leu Gly Glu Val Cys Glu Leu Ile Ala Ser Pro Glu Tyr

    95                  100                 105

gcg tac atg gat ggg aaa tct ctt aag ttt gag gtg gag ctt ttt gaa      386

Ala Tyr Met Asp Gly Lys Ser Leu Lys Phe Glu Val Glu Leu Phe Glu

110                 115                 120                 125

act atg ggc tct gat gtc agc aga aac aaa gat ggg agt att cgc aag      434

Thr Met Gly Ser Asp Val Ser Arg Asn Lys Asp Gly Ser Ile Arg Lys

                130                 135                 140

tca att att aaa aag gga aga gat atc cac aat cct gta gct ggg gct      482

Ser Ile Ile Lys Lys Gly Arg Asp Ile His Asn Pro Val Ala Gly Ala

            145                 150                 155

gaa gcc act att gtt ttc cgc aat ctt ttg aac ttg acg gag gaa aca      530

Glu Ala Thr Ile Val Phe Arg Asn Leu Leu Asn Leu Thr Glu Glu Thr

        160                 165                 170

gaa gtc aca tat tgt gtt ggc gac cct cca tca aac gta ccg gat gag      578

Glu Val Thr Tyr Cys Val Gly Asp Pro Pro Ser Asn Val Pro Asp Glu

    175                 180                 185

ttg gac caa tct gtt cgt cac atg aat aca ggt gaa gtc agc cgt att      626

Leu Asp Gln Ser Val Arg His Met Asn Thr Gly Glu Val Ser Arg Ile

190                 195                 200                 205

gtg gtt tac aaa gac ggt cat tca tta act tct gga gat tcg gat aaa      674

Val Val Tyr Lys Asp Gly His Ser Leu Thr Ser Gly Asp Ser Asp Lys

                210                 215                 220

gat aga ata gtt tac gaa cta aca ctg aag tct ttt gaa aag acc aaa      722

Asp Arg Ile Val Tyr Glu Leu Thr Leu Lys Ser Phe Glu Lys Thr Lys

            225                 230                 235

cac ctc tct ggt att acg tct ttt cca gag cga ata gcc tat gca aat      770

His Leu Ser Gly Ile Thr Ser Phe Pro Glu Arg Ile Ala Tyr Ala Asn

        240                 245                 250

aca ctt aaa gag aag gcc aac aat ttc tta aag gat tct aaa ttt gat      818

Thr Leu Lys Glu Lys Ala Asn Asn Phe Leu Lys Asp Ser Lys Phe Asp

    255                 260                 265

tca gct atc gaa tta tat aaa cgt ttg gac gat gag ctg cag tac gta       866

Ser Ala Ile Glu Leu Tyr Lys Arg Leu Asp Asp Glu Leu Gln Tyr Val

270                 275                 280                 285

gtg gct aat ggg cct acc aga caa agg aat tgt ctg ggg ttc act gta       914

Val Ala Asn Gly Pro Thr Arg Gln Arg Asn Cys Leu Gly Phe Thr Val

                290                 295                 300

gct gtc caa ctc aat tta gct ctg gtc tat ctg aag ctt tgt aaa ccc       962

Ala Val Gln Leu Asn Leu Ala Leu Val Tyr Leu Lys Leu Cys Lys Pro

            305                 310                 315

aga caa tgt att gag ttt tgc aag aaa gtg ctc gat aat ttt agc gac       1010

Arg Gln Cys Ile Glu Phe Cys Lys Lys Val Leu Asp Asn Phe Ser Asp

        320                 325                 330

aac gaa aag gcg cta ttt aga att ggt cag gca cat tta cta cgt aag       1058

Asn Glu Lys Ala Leu Phe Arg Ile Gly Gln Ala His Leu Leu Arg Lys

    335                 340                 345

gac cat gaa gaa gca gtt gtt tac ttc aaa gga ttg tat cca aaa atc       1106

Asp His Glu Glu Ala Val Val Tyr Phe Lys Gly Leu Tyr Pro Lys Ile

350                 355                 360                 365

cta aca atg cat ctg ctg tat aac agg ttc aaa tct gtg agg aag aga       1154

Leu Thr Met His Leu Leu Tyr Asn Arg Phe Lys Ser Val Arg Lys Arg

                370                 375                 380

tta gaa gag cca aaa gat ata gaa cga aag aag ttt cgt cat att ttc       1202

Leu Glu Glu Pro Lys Asp Ile Glu Arg Lys Lys Phe Arg His Ile Phe

            385                 390                 395

gaa cgt tgt aaa gac acc ggg att aaa ctc gat gct caa aat cat gag       1250

Glu Arg Cys Lys Asp Thr Gly Ile Lys Leu Asp Ala Gln Asn His Glu

        400                 405                 410

gat ggg gtt gta gtg aat gat gaa aag tct gcc ctg tgagagctta            1296

Asp Gly Val Val Val Asn Asp Glu Lys Ser Ala Leu

    415                    420                 425

attctgtgtg tggcatgaag ttagcacccc cgtgattttg taaatgtttc ttataattac  1356

tggtttaatt tcaagttgct gaatacattt taaagcaacc aaaaaaaaaa aaaaaaa     1413

<210>4

<211>425

<212>PRT

<213>日本血吸虫(Schistosoma japonicum)

<400>4

MSETPKQSEE EYLKDFIDLS PSGDRGILKK VVREGYSDIK PCDGDTVIVH     50

YVGTNFGGEK HGEVFDSSRA RNEKFEFTIG KGSVIKAWDI GVATMRLGEV     100

CELIASPEYA YMDGKSLKFE VELFETMGSD VSRNKDGSIR KSIIKKGRDI     150

HNPVAGAEAT IVFRNLLNLT EETEVTYCVG DPPSNVPDEL DQSVRHMNTG     200

EVSRIVVYKD GHSLTSGDSD KDRIVYELTL KSFEKTKHLS GITSFPERIA     250

YANTLKEKAN NFLKDSKFDS AIELYKRLDD ELQYVVANGP TRQRNCLGFT     300

VAVQLNLALV YLKLCKPRQC IEFCKKVLDN FSDNEKALFR IGQAHLLRKD     350

HEEAVVYFKG LYPKILTMHL LYNRFKSVRK RLEEPKDIER KKFRHIFERC     400

KDTGIKLDAQ NHEDGVVVND EKSAL                                425

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