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乙酰辅酶A羧化酶调控上皮性卵巢癌耐药、增殖及转移相关通路机制研究

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英文缩略列表

前言

第一部分 人ACACA基因RNAi靶点设计、合成及干扰载体构建

1.1实验主要仪器和试剂材料

1.2 实验方法

1.3 结果

1.4 讨论

第二部分 ACACA基因干扰慢病毒小量包装

2.1实验主要仪器和试剂材料

2.2实验方法

2.3结果

2.4讨论

第三部分ACACA基因干扰慢病毒感染A2780 TAXOL细胞后的qPCR检测

3.1实验主要仪器和试剂材料

3.2实验方法

3.3结果

3.4讨论

第四部分 A2780T-siACC细胞与A2780T-siGFP细胞ACC表达及耐药性、细胞周期的关系

4.1实验主要仪器和试剂材料

4.2实验方法

4.3结果

4.4讨论

第五部分 TOFA影响A2780细胞ACC活性表达及相关细胞通路的表达变化

5.1实验主要仪器和试剂材料

5.2实验方法

5.3结果

5.4讨论

课题小结

参考文献

致谢

攻读学位期间发表的学术论文

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摘要

研究目的:
  通过慢病毒干扰卵巢上皮肿瘤细胞中ACC的表达,以及通过TOFA调节ACC的活性,观察卵巢癌耐药性、侵袭性的变化,同时检测PI3K/Akt通路的表达水平,找出二者的关系,揭示卵巢上皮性肿瘤中ACC表达量/活性与肿瘤耐药和侵袭的关系,为临床开发卵巢癌的治疗药物提供新的思路。
  研究方法:
  1.通过PCR及Westernblot技术验证ACC在A2780及A2780泰素耐药株A2780T中的本底表达。
  2.通过生物信息学方法,检索干扰ACC基因表达的最优序列
  3.构建ACC真核表达质粒,脂质体转染卵巢上皮癌细胞A2780,摸索最佳干扰序列。
  4.化学合成载有ACC siRNA的慢病毒包装,并导入A2780-Taxol细胞
  5.应用MTT和流式细胞术(FCM),分别检测细胞在高表达ACC和不表达ACC两种情况下的增殖、细胞周期差异
  6.采用Western Blot方法检测A2780T细胞在TOFA处理下AAC、mTOR、Akt磷酸化及非磷酸化状态的表达,以及细胞在TOFA处理后与对照组的耐药性差异。
  研究结果:
  1.在A2780及A2780泰素耐药株中,检测到ACC的表达量差异,A2780泰素耐药株中ACC表达显著高于A2780野生型。
  2.构建成功装载有干扰ACC siRNA的慢病毒,并成功转入A2780T细胞,建立了A2780T-siACC的新的低表达ACC的细胞株及其对照组。
  3.研究验证了TOFA是通过通过磷酸化ACC导致其失活,从而导致细胞的耐药性降低及细胞周期停滞。TOFA不直接引起细胞凋亡,而需要与化疗药物协同作用。
  4.ACC表达的干扰可以引起A2780T细胞耐药性的显著降低。同时,通过TOFA磷酸化ACC导致其失活后,亦可以达到同样的效果。
  5.在TOFA处理的细胞中,通过westernblot检测PI3K/Akt活通路性相关的p-mTOR及p-Akt表达均明显下降,提示ACC的磷酸化可能通过影响PI3K/Akt通路的活性从而影响细胞的耐药性。
  研究结论:
  1.细胞内ACC的表达缺失及活性的抑制均可以导致细胞周期停滞、细胞对化疗药物的耐药性的降低。
  2.TOFA通过磷酸化ACC从而影响其活性。TOFA对细胞无直接杀伤作用,但可以协同化疗药物杀伤肿瘤细胞,对正常细胞没有明显影响,是一种潜在的卵巢癌的治疗药物
  3.ACC可能是通过其磷酸化而影响PI3K/Akt通路的活性来调节细胞的耐药性和侵袭性的。

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