微胶囊固定化重组大肠杆菌萃取发酵生产L-苯丙氨酸的研究

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第一章文献综述

引言

1.1 L-Phe概况

1.1.1 L-Phe的理化性质

1.1.2 L-Phe的应用及国内外市场概况

1.1.3 L-Phe的生产方法

1.2细胞固定化技术

1.2.1吸附法：

1.2.2离子/共价交联：

1.2.3包埋法：

1.2.4生物微胶囊技术

1.2.5 SA-CMC／CaCl2微胶囊体系

1.2.6 NaCS-PDMDAAC微胶囊体系

1.3 L-Phe的萃取分离

1.4本课题的研究意义及研究内容

1.4.1研究意义

1.4.2研究内容

第二章材料与方法

2.1 材料

2.1.1菌种及其保藏

2.1.2培养基

2.1.3其它主要试剂及仪器

2.2实验方法

2.2.1培养方法

2.2.2菌体生长量测定

2.2.3葡萄糖浓度的测定

2.2.4 L-Phe测定

2.2.NaCS的制备

2.2.6微胶囊的制备

2.2.7微胶囊的机械性能

第三章有机溶剂萃取分离L-Phe

引言

3.1材料和方法

3.1.1实验试剂

3.1.2实验方法

3.1.3分析方法

3.2实验结果与讨论

3.2.1稀释剂对实验的影响

3.2.2萃取前后水相溶液pH值的变化

3.2.3 L-Phe浓度对D的影响

3.2.4 D2EHPA浓度对D的影响及萃合物的结构

3.2.5不同温度对D的影响

3.2.6负载L-Phe有机相的反萃取

3.3小结

第四章游离重组大肠杆菌细胞生长特性

引言

4.1游离细胞生长特性

4.2萃取剂的生物相容性

4.3 SA-CMC/CaCl2微胶囊的生物相容性

4.3.1 SA的生物相容性

4.3.2 CMC的生物相容性

4.3.3 CaCl2的生物相容性

4.3.4 SA-CMC／CaCl2微胶囊的生物相容性

4.4 NaCS-PDMDAAC微胶囊的生物相容性

4.4.1 NaCS的生物相容性

4.4.2 PDMDAAC的生物相容性

4.4.3 NaCS-PDMDAAC微胶囊生物相容性

4.5本章小结

第五章SA—CMC／CaCl2微胶囊固定化重组大肠杆菌萃取发酵生产L-Phe

引言

5.1 SA-CMC／CaCl2微胶囊制备条件的确定

5.1.1 CMC制备浓度的确定

5.1.2 SA制备浓度的确定

5.1.3 CaCl2浓度的确定

5.1.4 SA-CMC／CaCl2微胶囊的机械性能

5.2 SA-CMC／CaCl2微胶囊萃取发酵生产L-Phe

5.2.1 SA-CMC／CaCl2微胶囊固定化细胞生长特性

5.2.2 SA-CMC／CaCl2微胶囊固定化细胞萃取发酵特性

5.3本章小结

第六章NaCS-PDMDAAC微胶囊固定化重组大肠杆菌萃取发酵生产L-Phe

引言

6.1 NaCS-PDMDAAC微胶囊制备条件的确定

6.1.1 NaCS制备浓度的确定

6.1.2 PDMDAAC制备浓度的确定

6.1.3 NaCS-PDMDAAC微胶囊的机械性能

6.2 NaCS-PDMDAAC微胶囊萃取发酵生产L-Phe

6.2.1 NaCS-PDMDAAC微胶囊固定化细胞生长特性

6.2.2 NaCS-PDMDAAC微胶囊固定化细胞萃取发酵特性

6.3本章小结

第七章结论与建议

7.1结论

7.2建议

参考文献

附录

在读期间发表论文

致谢