公开/公告号CN112195225A
专利类型发明专利
公开/公告日2021-01-08
原文格式PDF
申请/专利权人 南通大学附属医院;
申请/专利号CN202011096787.8
申请日2020-10-14
分类号C12Q1/686(20180101);C12Q1/689(20180101);C12Q1/14(20060101);C12R1/44(20060101);
代理机构32386 南通毅帆知识产权代理事务所(普通合伙);
代理人任毅
地址 226001 江苏省南通市崇川区西寺路20号
入库时间 2023-06-19 09:30:39
技术领域
本发明属于生物技术领域,尤其涉及一种基于耐药基因MecA检测耐甲氧西林葡萄球菌的方法。
背景技术
凝固酶阴性葡萄球菌(Cpagulase negative staphylococcus,CNS)如表皮葡萄球菌、人葡萄球菌、头状葡萄球菌等属于人体的正常菌群,我们人体体表及腔道都可存在,通常较少引起感染。然而,当机体免疫力低下,CNS菌群易位进入非正常部位时,可成为感染性病原菌。由于各类高档抗生素的广泛应用,临床介入诊疗操作的增多,CNS已成为院内感染的重要病原菌,可导致各种侵袭性感染
近年来,耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌(MRCNS)分离率持续增高,已成为全球面对的公共卫生问题。全国细菌耐药监测网(CARSS)统计分析,2018年度MRCNS全国平均检出率为75.7%,我省高达78.2%。南通大学附属医院2019年度共检出CNS 591株,其中MRCNS分离率为72.3%。耐甲氧西林葡萄球菌(MRS)耐药主要通过MecA基因编码低亲和力青霉素结合蛋白,从而导致对所有对β-内酰胺类、β-内酰胺酶抑制剂复合物、头孢菌素类(头孢洛林除外)及碳青霉烯类药物耐药。携带mecA基因的葡萄球菌常常连锁携带对其他药物的耐药基因,所以导致了MRS的高耐药率。因此,需高度重视MRS在临床上的耐药情况及相关耐药机制,CARSS及江苏省细菌耐药监测网均将其列为重点监测点之一。
正确掌握MRS的鉴定和耐药分析技术,对临床耐药具有重要意义,且可为全国细菌耐药监测提供准确的数据。MRS常规检测方法有表型检测法、基因检测法、蛋白检测法。目前,临床微生物实验室多采用美国临床实验室标准化委员会(CLSI)推荐的头孢西丁纸片扩散法或者苯唑西林最低抑菌浓度法。Naccache等研究发现,在适宜的条件下,如选择合适的抗生素、培养温度、菌液浓度等条件下,运用表型法检测MRSA与金标准基因法检测MecA基因有较高的符合率。然而对于CNS,运用表型法来检测MRS,会出现假性增高的现象
早在20世纪九十年代,众多学者即运用PCR技术来检测mec A基因。通常可根据mecA基因的靶序列设计引物或探针,再提取检测菌的基因组DNA,摸索并优化扩增条件,PCR扩增后产物行琼脂糖凝胶电泳观察产物。PCR具有较高的灵敏度,常被作为MRS检测的“金标准”。随着分子生物学技术的发展,研究者们不断改善检测mecA基因的PCR方法,如采用多重PCR、实时荧光定量PCR等检测分离菌的耐药基因,目前已有技术可采用临床标本对其直接进行检测
发明内容
本发明的目的在于以MecA基因为靶序列设计引物,运用探针技术,建立了一种有效检测MRS的荧光PCR法,并就其灵敏度、特异性和重复性进行临床评价,获得具有较高敏感性、特异性、经济性的方法,满足临床对MRS检测的精准需求。
具体的,本发明的技术方案如下:
本发明第一个方面公开了一种耐甲氧西林葡萄球菌(MRS)的检测方法,包括:
S1:设计引物与探针;
S2:抽提标本中的基因组DNA;
S3:实时荧光PCR进行检测;
所述引物包括上游引物和下游引物,核苷酸序列分别如SEQ ID NO:1和SEQ IDNO:2所示。
应当理解,本发明中的方法并不限于上述步骤,在S1之前、S1与S2之间、S2与S3之间,S3之后,本领域技术人员可以根据需要,增加其他额外的步骤,且均在本发明的保护范围之内。
应当理解,与SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2序列具有90%以上(例如92%、95%和98%等)同源性,且功能相同的序列均在本发明的保护范围之内。
优选的,所述探针的核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示;优选的,所述探针为TaqMan荧光探针。
应当理解,与SEQ ID NO:3序列具有90%以上(例如92%、95%和98%等)同源性,且功能相同的序列均在本发明的保护范围之内。
优选的,所述探针的5’端标记荧光报告基团FAM,3’端标记荧光淬灭基团TAMRA。
优选的,所述引物浓度为0.25μM/L-1μM/L;更优选的,所述引物浓度为0.5μM/L。
优选的,所述探针浓度为100-300nmol/L;更优选的,所述探针浓度为200nmol/L。
优选的,在S3中,PCR体系中Taq酶的用量为5.0U Taq酶。
优选的,在S3中,PCR体系中退火温度为55℃,退火时间为30s。
优选的,在S3中,PCR反应条件:依次94℃预变性5min;进行35个循环扩增;再72℃延伸7分钟;
其中,所述循环扩增条件:94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸90s。
本发明第二个方面公开了上述的方法在临床菌种检测中的应用。
优选的,所述菌种为耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌(MRCNS)。
在符合本领域常识的基础上,上述各优选条件,可任意组合,而不超出本发明的构思与保护范围。
本发明相对于现有技术具有如下的显著优点及效果:
本发明通过以MecA基因为靶序列设计引物,运用探针技术,建立了一种新的有效检测MRS的荧光PCR法,并就其灵敏度、特异性和重复性进行临床评价,证实该方法具有较高的敏感性、特异性和重复性,且该方法具有经济性,能够实现临床对MRS检测的精准需求。
附图说明
图1为本发明实施例中PCR产物琼脂糖凝胶电泳图。
图2为本发明实施例中PCR产物双向测序图(BioEdit Sequence AlignmentEditor软件分析后部分片段截图)。
图3为本发明实施例中MecA基因PCR扩增曲线图。
图4为本发明实施例中MecA基因PCR溶解曲线图。
图5为本发明实施例中实时荧光PCR检测MecA基因的灵敏度的结果示意图。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明的技术方案进行详细描述,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。
下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。本发明所用试剂和原料均市售可得。
实施例1
本实施例的设计思路如下:
一、根据MecA基因序列以及探针的设计原则合成引物和探针,建立一种有效检测MRS菌株的实时荧光定量PCR法;
二、对建立的PCR方法进行优化(PCR反应体系及反应条件);
三、对建立的方法进行临床应用评价(灵敏度和重复性试验)。
具体的,本发明的技术方案如下:
1、引物与探针的设计
从Genebank中查找MecA基因序列,运用MegAlign软件分析该序列,设计引物和探针(如表1所示),TaqMan荧光探针5’端均标记荧光报告基团FAM,3’端标记荧光淬灭基团TAMRA。引物与探针由Invitrogen公司合成。
表1引物和探针序列
2、基因组DNA抽提
共收集2018年南通大学附属医院各类标本中分离的MRCNS临床分离株共40株,设置ATCC 25923为阴性对照,ATCC 43300为阳性对照。取活化后的分离菌株4区划线接种在血平板上,35℃,补充5%CO
3、实时荧光PCR检测
PCR反应条件:94℃预变性5min,而后进行35个循环扩增(94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸90s),随后72℃延伸7分钟,ABI 7500于每个循环退火温度下收集荧光,运行程序结束后由仪器自带软件分析处理数据。
4、PCR体系和条件的优化
4.1引物浓度
PCR反应体系中,引物是PCR特异性反应的关键。引物浓度过低,会降低PCR扩增的产率;而引物浓度过高则会诱发错配,从而出现非特异性扩增。故设置了0.25、0.5、0.75及1.0μM/L 4个浓度进行优化,上下游引物浓度一致。
4.2荧光探针的浓度
适宜的探针浓度可明显提高检测的灵敏度,本研究共设置了100、150、200、300nmol/L4个浓度进行优化。
4.3 Taq酶的用量
适当增加Taq酶的用量,可提高PCR扩增效率,但过高可能导致非特异性条带的产生。比较了1.0、2.0、2.5、5.0U/体系时的扩增效率,选择最佳浓度。
4.4 PCR退火温度
变性后温度快速冷却至40~60℃,可使引物和模板发生结合。退火温度一般取决于引物的长度、碱基组成及其浓度、靶基序列的长度。退火温度是影响PCR特异性的较重要因素。因此,在Tm值附近选择退火温度,共设定了56、55、54及53℃4个温度进行实验。
4.5 PCR退火时间
退火时间对PCR产物的稳定性有较大影响,故选择了10、20、30、40s 4个时间进行比较,确定最佳退火时间。
5、评估所建立的荧光定量PCR方法
5.1灵敏度实验
以ATCC 43300基因组DNA为模板构建MecA基因重组质粒,用TE倍比稀释,配制浓度为10
5.2重复性实验
选择1×10
6、临床样本检测
对收集的40株临床分离菌进行PCR扩增,检测MecA基因。每次实验需设立阳性、阴性及无模板对照。
7、结果评价
7.1 PCR体系和条件的优化
当引物浓度为0.25μM/L时,扩增效率变差,当引物浓度为0.5μM/L时,扩增效率稳定且无非特异性扩增;当TaqMan探针浓度为200nmol/L时,PCR扩增荧光强度值最高,且Ct值较小;Taq酶的用量对PCR的扩增效率有较大影响,当每个体系中加入5.0U Taq酶,扩增效率较高;选择退火温度为55℃,退火时间为30s,PCR扩增效率较高,且结果稳定。PCR产物行琼脂糖凝胶电泳,并送公司测序验证扩增产物为目的基因(实验结果如图1-4所示)。
7.2灵敏度分析
5个稀释浓度参考样品均呈阳性反应,且在参考样品10
7.3重复性分析
1×10
7.4临床样本检测
对临床收集的40株CNS进行MecA基因型检测,其中运用表型法苯唑西林最低抑菌浓度法(VITEK 2COMPACT测定)均鉴定为MRCNS,其中仅有21株MecA基因阳性。
综上所述,近年来,MRCNS是引起医院相关性感染的重要病原菌之一,分离率持高不下,世界各地也相继报道了MRCNS所致的严重院内感染,形式极其严峻。MRCNS除了含有MecA耐药基因,常常连锁携带对其他药物的耐药基因,造成对多种抗菌药物耐药,给临床治疗带来严重的压力
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
参考文献
[1]C Heilmann,W Ziebuhr,K Becker.Are Coagulase-Negative StaphylococciVirulent?Clin Microbiol Infect.2019;25(9):1071-1080.
[2]Xavier Argemi1,Yves Hansmann,Kevin Prola,et al.Coagulase-NegativeStaphylococci Pathogenomics.Int J Mol Sci.2019;20(5):1215.
[3]Naccache SN,Callan K,Burnham CA,et al.Evaluation of Oxacillin andCefoxitin Disk Diffusion and Microbroth Dilution Methods for Detecting mecA-Mediatedβ-Lactam Resistance in Contemporary Staphylococcus epidermidisIsolates.J Clin Microbiol.2019;57(12):e00961-19.
[4]Ferreira RB,Nunes AP,Kokis VM,et al.Simultaneous detection of the mecAand ileS-2 genes in coagulase-negative staphylococci isolated from Brazilianhospitals by multiplex PCR.DiagnMicrobiol Infect Dis.2002;42(3):205-212.
[5]Bogado I,Limansky A,Sutich E,et al.Molecular characterization ofmethicillin-resistant coagulase-negative staphylococci from a neonatalintensive care unit.Infect Control Hosp Epidemiol.2002;23(8):447-451.
[6]Stegger M,Andersen PS,Kearns A,et al.Rapid detection,differentiation and typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureusharbouring either mecA or the new mecA homologue mecA(LGA251).Clin MicrobiolInfect.2012;18(4):395-400.
[7]Wang HY,Kim S,Kim J,et al.Multiplex real-time PCR assay for rapiddetection of methicillin-resistant staphylococci directly from positive bloodcultures.J Clin Microbiol.2014;52(6):1911-1920.
[8]Weidner J,Cassens U,
[9]Nijjar CK,Smith MH,Eltringham IJ.Adjunctive mecA PCR for routinedetection of methicillin susceptibility in clinical isolates of coagulase-negative staphylococci.J Clin Microbiol.2014;52(5):1678-1681.
[10]Okolie CE.Real-Time PCR to Identify Staphylococci and Assay forVirulence from Blood.Methods Mol Biol.2017;1616:183-207.
[11]Siripornmongcolchai T,Chomvarin C,Chaicumpar K,et al.Evaluationof different primers for detecting mecA gene by PCR in comparison withphenotypic methods for discrimination of methicillin-resistant Staphylococcusaureus.Southeast Asian J Trop Med Public Health.2002;33(4):758-763.
[12]Maria Miragaia.Factors Contributing to the Evolution of mecA-Mediatedβ-Lactam Resistance in Staphylococci:Update and New Insights FromWhole Genome Sequencing(WGS).Front Microbiol.2018;9:2723.
[13]Nguyen DT,Yeh E,Perry S,et al.Real-time PCR testing for mecAreduces vancomycin usage and length of hospitalization for patients infectedwith methicillin-sensitive staphylococci.J Clin Microbiol.2010;48(3):785-90.
[14]Pedroso SHSP,Sandes SHC,Filho RAT,et al.Coagulase-NegativeStaphylococci Isolated from Human Bloodstream Infections Showed MultidrugResistance Profile.Microb Drug Resist.2018;24(5):635-647.
[15]Ho YC,Chang SC,Lin SR,et al.High levels of mecA DNA detected by aquantitative real-time PCR assay are associated with mortality in patientswith methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteremia.J ClinMicrobiol.2009 May;47(5):1443-1451.
机译: MECA MECA MECA MECA基因扩增引物对MECA基因检测试剂盒和MECA基因检测方法
机译: 用于mecA基因扩增的引物对,mecA基因检测试剂盒和mecA基因检测方法
机译: mecA基因扩增底漆对,mecA基因检测试剂盒和mecA基因检测方法