凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白

技术领域

本发明涉及生物技术领域，具体涉及本发明涉及的一种凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白、基因、重组载体、转化体及其用途和制备方法。

背景技术

超氧化歧化酶(superoxide dismutase简称SOD)是一种催化超氧物阴离子(O2-)歧化反应的酶。人和哺乳动物的SOD有3种同工酶：胞内SOD(Cu，Zn-SOD)、线粒体SOD(Mn-SOD)和胞外SOD(EC-SOD，也是Cu，Zn-SOD)。EC-SOD[Marklund SL，BjelleA，Elmqvist LG，et al.Ann Rheum Dis.1986，45：847-851]在人体内的含量最少，主要存在于组织的胞外基质和细胞表面，其氨基酸序列按功能可分成四个结构域：N端先是一个18个氨基酸残基的信号肽；然后是95个残基的与EC-SOD形成四聚体有关的结构域；后面是98个残基的SOD活性结构域；最后是29个残基的富含碱性氨基酸残基的细胞转导结构域(PTD，protein transduction domains)[Hjalmarsson K，Marklund SL，Engstrom A，et al.Proc Natl Acad Sci USA.1987，84：6340-6344]。这个结构域能与细胞表面的肝素类多糖组织结合[Karlsson K，Marklund SL.Lab Invest.1989，60：659-666]，并能以内吞作用实现跨膜转导，将其定位到细胞核。

源于鸡贫血病毒的凋亡素(Apoptin)，或称凋亡蛋白，由121个氨基酸残基的组成，它能够在人的各种肿瘤细胞中诱导一种不依赖于p53，并且对Bcl-2不敏感的细胞凋亡，但对正常人体细胞没有影响，是一个非常有应用前景的肿瘤选择性治疗的候选药物[Zhuang SM，Shvarts A，van Ormondt H，et.al.Cancer Res.1995，55(3)：486-489]。研究表明，凋亡素诱导的细胞凋亡需要凋亡素本身被转运到细胞内，然后依靠凋亡素本身所具有的核定位序列(NLS，nuclear localization sequence)在细胞核中聚集，以目前尚不太清楚的机制，导致细胞的凋亡。凋亡素诱导的细胞凋亡与其本身的特殊氨基酸残基的磷酸化过程有关，其凋亡过程与Caspase-3通路有密切联系[Noteborn MH.VetMicrobiol.2004，98(2)：89-94]。

由上可知，由凋亡素诱导的肿瘤细胞凋亡的关键点是如何将凋亡素快速、高效的转运入肿瘤细胞，实现跨膜蛋白质分子的转运。目前，已经有许多具有蛋白质转运功能的跨膜结构域(PTD)被研究发现，典型的有来自于人HIV病毒的TAT结构域，黑腹果蝇的触足肽(Antp)，纯疱疹病毒转录调节蛋白(VP22)，多聚精氨酸序列以及EC-SOD的羧基末端蛋白转导域等等。PTD一般由长度多数小于20个氨基酸序列组成，含有一个高度正电荷区和一个螺旋结构。PTD可以携带多种物质，包括亲水性蛋白、多肽、DNA甚至颗粒性物质等进行细胞间/内的传输，且不受细胞类型的限制[Schwarze SR，DowdySF.Trends Pharmaeol Sci.2000，21(2)：45-48]。不过，其转运的效率与PTD本身以及与其融合的蛋白质性质有密切关系。因此，要实现一个蛋白质分子的高效跨膜转移，选择一个合适的PTD至关重要。对于加强凋亡素诱导肿瘤细胞凋亡的效应来说，就是需要寻找合适的PTD，帮助将凋亡素快速、高效的转运入细胞内部，发挥其凋亡作用，达到控制肿瘤细胞生长，治疗疾病的目的。

发明内容

本发明所要解决的技术问题提供了一种凋亡素融合蛋白，以便于其能快速、高效的转运入细胞内部，发挥其凋亡作用，达到控制肿瘤细胞生长，治疗疾病的目的。

为此本发明一方面公开了，一种凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白，其特征在于该融合蛋白含有与氨基酸序列如SEQ ID NO.1所述EC-SOD羧基末端蛋白转导域或其突变体融合的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所述凋亡素或其突变体。

本发明的发明思路为通过基因工程技术人为将EC-SOD羧基末端蛋白转导域或其突变体与凋亡素或其突变体构成融合蛋白，通过EC-SOD羧基末端蛋白转导域或其突变体实现跨膜蛋白质分子的转运，从而发挥凋亡素或其突变体的诱导凋亡作用，达到控制肿瘤细胞生长，治疗疾病的目的。在这一思路下，本发明所保护范围包括但不局限于上述融合蛋白。

在一实施方式中，所述凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白可具有下式：R2-R1、R1-R2、R1-L-R2-L-R1、R1-L-R2、R2-L-R1或R2-L-R1-L-R1，其中R1是氨基酸序列如SEQ ID NO.1所述EC-SOD羧基末端蛋白转导域或其突变体，L是连接肽，R2是至少一个氨基酸序列如SEQ ID NO.2所述凋亡素或其突变体，但不必是相同的治疗性蛋白质。连接肽包括例如：(GGGGS)_N或(GGGS)_N或(GGS)_N，其中N是大于或等于1的整数，G表示甘氨酸，S表示丝氨酸。

在一实施方式中，所述凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白中，氨基酸序列如SEQ ID NO.1所述EC-SOD羧基末端蛋白转导域或其突变体位于所述融合蛋白的羧基末端。

在一实施方式中，所述凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白，为如下(a)或(b)的蛋白：

(a)其氨基酸序列如SEQ ID NO.3所述的蛋白；(b)至少与(a)中的氨基酸序列60％同源性且具有诱导细胞凋亡作用活性的蛋白。

一方面，本发明公开了一种编码本发明所述凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的多核苷酸分子。

在一实施方式中，所述多核苷酸分子的核酸序列如SEQ ID NO.4所述。

一方面，本发明公开了一种包含本发明所述多核苷酸分子的重组表达载体。

一方面，本发明公开了一种包含本发明所述重组表达载体的转化体。

在一实施方式中，所述转化体为大肠杆菌。

另一方面，本发明公开了一种本发明所述凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的制备方法，包括如下步骤：

①凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白表达载体的构建；

②凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白转化体的制备；

③凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的表达；

④凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的纯化。

另一方面，本发明公开了一种组合物，包括本发明所述凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白和药学上可接受的载体。

另一方面，本发明公开了本发明所述凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白在制备治疗由细胞增殖过度引起的疾病药物中应用。

在一实施方式中，所述由细胞增殖过度引起的疾病为肿瘤。

另一方面，本发明包括预防、治疗或改善由细胞增殖过度引起的相关疾病或失调的方法，所述方法包括给需要所述预防、治疗或改善的哺乳动物施用含有有效量凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白，以治疗、预防或改善疾病或失调。

通过体外培养的肿瘤细胞凋亡试验和小鼠腹水瘤抑制试验证明，本发明制备的凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白具有很强的诱导肿瘤细胞凋亡的能力，可以用来制备治疗肿瘤的药物。

附图说明

图1PCR扩增的EC-SOD羧基末端蛋白转导域基因片段2％琼脂糖凝胶电泳图谱；

图2表达质粒C-pET28a构建过程示意图；

图3PCR扩增的凋亡素基因片段1.5％琼脂糖凝胶电泳图谱；

图4克隆质粒Apop-pMD18T构建过程示意图；

图5表达质粒ApopC-pET28a构建过程示意图；

图6菌落PCR检测重组菌插入片段的1.5％琼脂糖凝胶电泳图谱；

图7纯化的重组Apoptin-EC-SOD-PTD SDS-PAGE电泳分析图谱；

图8不同浓度重组Apoptin-EC-SOD-PTD对HeLa细胞的存活率的影响；

图9重组Apoptin-EC-SOD-PTD对体外培养的人正常肝细胞的存活率的影响。

具体实施方式

在本文，术语“突变体”是指氨基酸序列如SEQ ID NO.1所述EC-SOD羧基末端蛋白转导域或氨基酸序列如SEQ ID NO.2所述凋亡素的突变体。相比于天然的EC-SOD羧基末端蛋白转导域或所述凋亡素蛋白，该突变体与它们野生型相比，具有增强的活性和/或改变了的立体专一性。天然蛋白的氨基酸序列突变体可通过向本发明的核苷酸中引入适当的核苷酸变化、或通过体外合成所需多肽来制备。这些突变体包括，例如缺失、插入或替换该氨基酸序列中的残基。可以通过缺失、插入和替换的组合以得到最终的构建体，提供最终的蛋白产品。

蛋白的同源性百分比由GAP(Needleman和Wunsh，1970)分析(GCG程序)确定，其中参数gap creation penalty＝5，gap extension penalty＝0.3。被分析的序列长度至少为15个氨基酸时，GAP分析就在参与测试的两个序列的至少为15个氨基酸的区域进行测试。更优选地，被分析的序列长度至少为50个氨基酸时，GAP分析就在参与测试的两个序列的至少为50个氨基酸的区域进行测试。更优选地，被分析的序列长度至少为100个氨基酸时，GAP分析就在参与测试的两个序列的至少为100个氨基酸的区域进行测试。更优选地，被分析的序列长度至少为250个氨基酸时，GAP分析就在参与测试的两个序列的至少为250个氨基酸的区域进行测试。甚至更优选地，被分析的序列长度至少为500个氨基酸时，GAP分析就在参与测试的两个序列的至少为500个氨基酸的区域进行测试。

本发明涉及的方面还包括凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白类似物，在它们合成期间或合成后进行了不同的修饰，例如，通过生物素化、苄基化、糖基化、乙酰化、磷酸化、由已知保护/封闭基团的衍生作用、蛋白水解的切割作用、连接到抗体分子或其它细胞配体上等。这些修饰可以用来增加本发明凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的稳定性和/或生物活性。

融合蛋白的表达

本发明包括编码本发明的凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的DNA以及含有这些DNA的载体、转化体。

本发明中，使用的术语“转化体”(transformant)，即带有异源DNA分子的宿主细胞。

本发明还包括通过合成和重组技术生产本发明的凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的方法。通过本领域已知的方法可以分离和纯化多核苷酸(DNA或RNA)、载体、转化体和生物体。

用于本发明的载体可以是如噬菌体、质粒、粘粒、微型染色体、病毒或逆转录病毒载体。可用于克隆和/或表达本发明的多核苷酸的载体是能在需复制和/或表达多核苷酸的宿主细胞中复制和/或表达多核苷酸的载体。一般说来，多核苷酸和/或载体可用于任何真核或原核细胞，包括哺乳动物细胞(如人(如HeLa)、猴(如Cos)、兔(如兔网织红细胞)、大鼠、仓鼠(如CHO、NSO和幼仓鼠肾细胞)或小鼠细胞(如L细胞))、植物细胞、酵母细胞、昆虫细胞或细菌细胞(如大肠杆菌)。有关适用于多种类型宿主细胞的适当载体的例子可参见例如F.Ausubel et al.，Current Protocols inMolecular Biology.Greene Publishing Associates and Wiley-Interscience(1992)和Sambrook et al.(1989)。可以使用含有这些多核苷酸的宿主细胞来大量表达可用于例如药物、诊断试剂、疫苗和治疗剂的蛋白质。

已开发出多种方法用于经由互补的粘性末端使多核苷酸与载体可操作相连。例如，可在欲插入载体DNA内的DNA区段添加互补的同聚体序列片段。然后通过互补同聚体尾之间的氢键连接载体和DNA区段以形成重组DNA分子。

含有一或多种限制性位点的合成接头提供了另一种连接DNA区段与载体的方法。用噬菌体T4DNA聚合酶或大肠杆菌DNA聚合酶I处理通过内切核酸酶限制性消化产生的DNA区段，所述的两种聚合酶用其3’，5’-核酸外切活性除去突出的γ-单链末端，并用其聚合活性补平3’-凹端。因此，这些活性的联合产生了平端DNA区段。然后在能催化平端DNA分子连接的酶，如噬菌体T4DNA连接酶的存在下将平端区段与大摩尔过量的接头分子一起保温。因此，反应产物是末端携有聚合接头序列的DNA区段。然后用适当的限制性酶裂解这些DNA区段，并连接至已用酶裂解的表达载体中，所述酶能产生与所述DNA区段相容的末端。从多个商家可以买到含有多个限制性内切核酸酶位点的合成接头。

多核苷酸插入物应该可操作地连接于同表达多核苷酸的宿主细胞相容的适当启动子上。启动子可以是强启动子和/或诱导型启动子。列举的一些启动子的例子包括噬菌体λPL启动子、大肠杆菌lac、trP、phoA、tac启动子、SV40早期和晚期启动子以及逆转录病毒LTR启动子。其它适当启动子是本领域技术人员已知的。表达重组载体进一步含有转录起始、终止位点，并在转录区含有用于翻译的核糖体结合位点。重组载体表达的转录物的编码部分可包括位于起点处的翻译起始密码子和适当地位于被翻译多肽的末端的终止密码子(UAA，UGA或UAG)。

如上所述，表达载体可包括至少一个选择标记。所述标记包括对真核细胞培养物而言的二氢叶酸还原酶、G418、谷氨酰胺合酶或新霉素抗性；以及用于大肠杆菌和其它细菌培养的四环素、卡那霉素或氨卞青霉素抗性基因。适当宿主的代表性例子包括但不限于：细菌细胞，如大肠杆菌、链霉菌和鼠伤寒沙门氏菌细胞；真菌细胞，如酵母细胞(如酿酒酵母或巴斯德毕赤酵母)；昆虫细胞，如果蝇S2和夜蛾SF9细胞；动物细胞，如CHO，COS，NSO，293和Bowes黑素瘤细胞；和植物细胞。上述宿主细胞的适当培养基和培养条件是本领域已知的。

为了有效地分离纯化或分泌目标蛋白，常常还可利用便于分离纯化的标签蛋白或标签多肽(Tag)。常用的有谷胱甘肽-S-转移酶(glutathione S-transferase，GST)、六聚组氨酸肽(His.Tag)、蛋白质A(protein A)和纤维素结合位点(cellulose binding domain)等。通过特殊性蛋白或多肽与目标蛋白构成融合蛋白的形式，表达后利用所述的标签蛋白或标签多肽的特殊性质可对目标蛋白进行分离和纯化。如His.Tag与Ni-ChelatingSepharose柱特异性结合。所述的标签蛋白或标签多肽可以在纯化后用位点特异性蛋白酶消化去除融合序列，如可用凝血酶、肠激酶和Xa因子等，以获得目标蛋白。

本发明还包括含有本发明的核苷酸序列的宿主细胞，所述核苷酸序列经本领域已知的技术与一或多种异源控制区(如启动子和/或增强子)可操作相连。可以选择能调节插入的基因序列的表达，或能按照所需的特殊方式修饰和加工基因产物的宿主菌株。在某些诱导物的存在下，某些启动子启动的表达会升高；因此，可以控制经基因改造的多肽的表达。另外，不同宿主细胞具有特征性的和特殊的翻译、翻译后加工和修饰(如磷酸化、裂解)蛋白质的机制。可以选择适当的细胞系以确保对表达的外源蛋白质进行合乎需要的修饰和加工。

通过磷酸钙转染、DEAE-葡聚糖介导的转染、阳离子脂质介导的转染、电穿孔、转导、感染或其它方法，即可将本发明的核酸和核酸重组载体导入宿主细胞。所述方法描述于多个标准的实验室手册中，如Davis et al.，Basic Methods In Molecular Biology(1986)。

编码本发明的所述融合蛋白的多核苷酸可以与含有选择标记的载体连接以在宿主中增殖。一般说来，可在沉淀物，如磷酸钙沉淀物或其与带电脂质的复合物中导入质粒载体。如果载体是病毒，可使用适当的包装细胞系在体外对其进行包装，再转导至宿主细胞。

通过众所周知的技术可以鉴定出被成功转化的细胞，即含有本发明的DNA重组载体的细胞。例如，可培养导入表达重组载体所得的细胞以产生所需多肽。收集并裂解细胞，使用如Southem(1975)J.Mol.Biol.95，503或Berent et al(1985)Biotech.3，208所述的方法，检测其DNA内容物中DNA的存在。或者，使用抗体检测上清液中蛋白质的存在。

通过众所周知的方法从重组细胞培养物中回收和纯化本发明的所述融合蛋白较为有利，所述方法包括硫酸按或乙醇沉淀、酸提取、阴离子或阳离子交换层析、磷酸纤维素层析、疏水作用层析、亲和层析、羟基磷灰石层析、疏水电荷作用层析和凝集素层析。在一些实施方案中，可使用高效液相层析(HPLC)进行纯化。

在一些实施方案中，可使用上述的一种或多种层析方法纯化本发明的所述融合蛋白。在其它实施方案中，可使用下述的一种或多种层析柱纯化本发明的所述融合蛋白，所述层析柱有：Q sepharose FF柱、SP sepharose FF柱、Q sepharose High Performance柱、Blue sepharose FF柱、Blue柱、Phenyl Sepharose FF柱、DEAE Sepharose FF、Ni-Chelating Sepharose FF柱或Methyl柱等。

另外，可使用国际公开号WO00/44772(全文列入本文作为参考)中描述的方法纯化本发明的融合蛋白。本领域技术人员可以容易地改动其中所述的方法以用于纯化本发明的融合体蛋白。可以从包括例如细菌、酵母、高等植物、昆虫和哺乳动物细胞的原核或真核宿主经重组技术产生的产物中回收本发明的融合蛋白。

在一较优实施例中，本发明提供的凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白制备方法包括以下步骤：

a.构建克隆有EC-SOD羧基末端蛋白转导域基因的表达质粒C-pET28a；

b.构建克隆有凋亡素基因的克隆质粒Apop-pMD18T；

c.构建克隆有凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白基因的表达质粒ApopC-pET28a；

d.凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的表达和纯化；

上述a.中所述的表达质粒C-pET28a的构建方法是：设计5’端和3’端引物，采用PCR的方法从克隆有EC-SOD全长基因的EC-SOD-pSK质粒中将EC-SOD羧基末端蛋白转导域(第196-222位氨基酸残基)克隆，在此片段的N-末端接上一端8个氨基酸残基长度的连接肽，然后将此片段克隆入pET28a的Hind III和Xho I位点，构成EC-SOD羧基末端蛋白转导域基因的表达质粒C-pET28a。

上述b.中所述的克隆质粒Apop-pMD18T的构建方法是：设计5’端和3’端引物，采用PCR的方法从克隆有凋亡素全长基因的Apoptin-pVK质粒中将凋亡素全长基因(第1-121位氨基酸残基)克隆，此基因的5’端和3’端两侧分别接上了Nde I和BamH I酶切位点，然后将此片段克隆入pMD-18T质粒，构成克隆有凋亡素基因的克隆质粒Apop-pMD18T。

上述c.中所述的表达质粒ApopC-pET28a的构建方法是：将克隆质粒Apop-pMD18T分别用，分离得目标片段，然后将此片段插入已同样经Nde I和BamH I双酶切的C-pET28a表达载体中，构建成克隆有凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白基因的表达质粒ApopC-pET28a。

上述d.中所述的凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的表达和纯化的方法是：将构建的ApopC-pET28a重组质粒转入融合有T7RNA聚合酶基因的大肠杆菌宿主中。转入的宿主可以是E.coli BL21(DE3)，BL21(DE3)pLysS，JM109(DE3)，Rosetta(DE3)，Rosetta DE3pLysS等。将构建的工程菌在添加有50ug/ml终浓度卡那霉素的LB培养基37℃振荡培养至OD600nm达到0.3-0.6时，加入IPTG至终浓度为0.5-3mM，诱导培养3-5hr，收集菌体进行超声破碎，离心收集包涵体，经SDS-PAGE电泳检测后，采用8M尿素变性溶解包涵体，上镍柱进行亲和层析分离，分段收集目的蛋白组分，进行稀释法复性，浓缩。除菌过滤后进行蛋白含量测定，保存待用。

用途

本发明所示的融合蛋白作为活性成分可用以治疗各种由细胞增殖过度引起的疾病，如肿瘤，包括但不限于：骨癌类，包括：尤因肉瘤、骨肉瘤、软骨肉瘤等；脑和CNS肿瘤，包括：听神经瘤、神经母细胞瘤、神经胶瘤和其他脑肿瘤，脊髓肿瘤、乳癌、结肠直肠癌、进展期结肠直肠腺癌；内分泌癌类，包括：肾上腺皮质癌、胰癌、脑垂体癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、胸腺癌、多发性内分泌肿瘤；胃肠癌类，包括：胃癌、食道癌、小肠癌、肝癌、肝外胆管癌、胃肠类癌性肿瘤、胆囊癌；泌尿生殖器癌类，包括：翠丸癌、阴茎癌、前列腺癌；妇科癌类，包括：子宫颈癌、卵巢癌、阴道癌、子宫/子宫内膜癌、阴部癌、妊娠滋养细胞肿瘤、输卵管癌、子宫肉瘤；头和颈部肿瘤类，包括：口腔癌、唇癌、唾腺癌、喉头癌、下咽癌、正咽癌、鼻癌、鼻窦癌、鼻咽癌；血癌类，包括：儿童白血病、急性淋巴性白血病、急性骨髓性白血病、慢性淋巴性白血病、慢性骨髓性白血病、发状细胞性白血病、急性早幼粒细胞白血病、血浆细胞性白血病；骨髓癌血液病症，包括：骨髓分化不良症候群、骨髓增生性病症、再生障碍性贫血、范可尼贫血、特发性巨球蛋白血症；肺癌类，包括：小细胞肺癌、非小细胞肺癌；淋巴癌类，包括：霍奇金病、非霍奇金氏淋巴瘤、皮肤型T-细胞淋巴瘤、周围T-细胞林巴瘤、AIDS相关性淋巴瘤；眼癌类，包括：视网膜母细胞瘤、葡萄膜黑色素瘤；皮肤癌类，包括：黑色素瘤、非黑色素瘤皮肤癌、梅克尔细胞癌；软组织肉瘤类，例如：儿童软组织肉瘤、成人软组织肉瘤、卡波希肉瘤；泌尿系统癌症，包括：肾癌维尔姆斯肿瘤、膀肤癌、尿道癌或转移性细胞癌。

本发明所公开的融合蛋白，可以用来治疗的癌类首先为肝癌或肺癌。

可藉由本发明的融合蛋白加以治疗的优选肿瘤类为固态肿瘤和血液恶性疾病。

本文所使用的术语“肿瘤”一般是指广泛的以细胞的失控性异常生长为特征的病症。

所用的活性成分的有效剂量可随给药模式和待治疗疾病的严重程度而变化。对大部分大型哺乳动物而言，每天施以有效成分的总剂量约为0.01-1000mg。通常，成人临床给药量的范围为0.01-200mg/日，优选为0.05-100mg/日。

“有效剂量”或“治疗量”均是指足以产生疗效的量。有效量可分一或多次给药。通常，有效量足以缓和、改善、稳定、减慢或延迟疾病的进一步发展。

组合物

用于本发明或者含有本发明所述融合蛋白的组合物。通常，当本发明组合物用于上述用途时，所述融合蛋白可与一种或多种药学上可接受的载体或赋形剂混合制成不同给药途径的药物剂型，如片剂、胶囊、散剂、颗粒剂、糖浆剂、溶液剂、口服液、醑剂、酊剂、气雾剂、粉雾剂、注射剂、注射用无菌粉末、栓剂等。

“药学上可接受的”成分是适用于人和/或动物而无过度不良副反应(如毒性、刺激和变态反应)即有合理的效益/风险比的物质。“药学上可接受的载体”是用于将本发明的融合体蛋白传送给动物或人的药学上或食品上可接受的溶剂、悬浮剂或赋形剂。载体可以是液体或固体。

本发明的融合蛋白可经过口服、静脉内、肌内或皮下途径给药。

上述剂型中可经口服给药的剂型为：片剂、胶囊、散剂、颗粒剂、糖浆剂、溶液剂、醑剂。固态载体包括：淀粉、乳糖、磷酸氢钙、微晶纤维素、蔗糖、白陶土、微粉硅胶、滑石粉、低取代羟丙基纤维素、羧甲基淀粉钠、聚乙烯吡咯烷酮。而液态载体包括：无菌水、乙醇、聚乙二醇、非离子型表面活性剂和食用油(如玉米油、花生油和芝麻油)。在制备药物组合物的过程中通常使用的佐剂包括：调味剂、着色剂、防腐剂(如羟苯烷基丁酯、苯甲酸钠、山梨酸)和抗氧化剂(如维生素E、维生素C、焦亚硫酸钠和二丁基羟基甲苯)。

上述剂型中可用于注射途径给药的剂型包括：注射剂、注射用无菌粉末，它们是将药物与一种或多种药学上可接受的赋形剂混合制成以供注射给药的形式。溶剂包括：无菌水、乙醇、甘油、丙二醇、聚乙二醇。此外，还需加入抑菌剂(如苯甲醇、羟苯丁酯、硫柳汞)、等渗调节剂(如氯化钠、葡萄糖)、助悬剂(如羧甲基纤维素钠、甲基纤维素)、增溶剂(吐温-80、卵磷酯)、抗氧化剂(如维生素E、维生素C、焦亚硫酸钠)和填充剂(如乳糖、甘露醇)。

从易于制备和给药的立场看，优选的药物组合物是固态组合物，尤其是冻干粉针剂。优选静脉给药。

以下结合具体实施例，进一步阐明本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，或按照制造厂商所建议的条件。比例和百分比基于重量，除非特别说明。

实施例1：

构建克隆有EC-SOD羧基末端蛋白转导域基因的表达质粒C-pET28a

1.EC-SOD羧基末端蛋白转导域基因的PCR扩增

(1)根据Genbank公布的人EC-SOD的基因序列，设计亚克隆EC-SOD羧基末端蛋白转导域基因的正向和反向引物：

P1：5’-TAATAAGCTTCCGCTGGAGGCGGTGGAAGCGGGCCCGGGCTC-3’

P2：5’-ATCTCGA GGGCGGCCTTGCACTCGCTCT-3’

在正向引物P1中，导入了一个Hind III酶切位点和一段8个氨基酸残基的连接肽(AlaSerAlaGlyGlyGlyGlySer)；在反向引物P2中，导入了一个Xho I酶切位点。

(2)PCR扩增的反应条件为：先94℃，变性5min，然后94℃，变性30s→60℃，复性30s→72℃，延伸1min，循环30次，最后72℃，5min。

(3)将PCR产物回收后用Hind III和Xho I双酶切待用。

2.重组表达质粒C-pET28a的构建

将PCR扩增、酶切得到的插入片段，与已经用同样的酶水解、回收的pET28a质粒DNA连接，转化E.coli DH5α菌株，培养，回收重组质粒DNA，测序验证。

3.PCR扩增所得的目标片段2％琼脂糖电泳图谱见图1。图中，M为标准分子量DNAMarker；1为扩增得到的约120bp的EC-SOD羧基末端蛋白转导域基因片段。

4.表达质粒构建过程示意图见图2。

实施例2：

构建克隆有凋亡素基因的克隆质粒Apop-pMD18T

1.凋亡素基因的PCR扩增

(1)根据Genbank公布的鸡贫血病毒VP3蛋白的基因序列，设计亚克隆凋亡素全长基因的正向和反向引物：

P3：5’-GACATATGATGAACGCTCTCCAAGAAGA-3’

P4：5’-TGGGATCCTTACAGTCTTATACGCCTTTTTG-3’

在正向引物P3中，导入了一个Nde I酶切位点；在反向引物P2中，导入了一个BamH I酶切位点和终止密码子。

(2)PCR扩增的反应条件为：先94℃，变性5min，然后94℃，变性30s→55℃，复性30s→72℃，延伸45s，循环30次，最后72℃，5min。

(3)将PCR产物回收待用。

2.重组克隆质粒Apop-pMD18T的构建

将PCR扩增回收得到的插入片段与市售pMD18T载体(购自宝生物工程公司)DNA连接，转化E.coli DH5α菌株，培养，通过蓝白斑筛选阳性克隆，再经液体培养基培养后回收重组质粒DNA，测序验证。

3.PCR扩增所得的凋亡素全长基因片段1.5％琼脂糖电泳图谱见图3。图中1为PCR扩增得的约370bp的凋亡素全长因；M为标准分子量DNA Marker。

4.表达质粒构建过程示意图见图4。

实施例3：

构建克隆有凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白基因的表达质粒ApopC-pET28a

1.凋亡素基因插入片段的获取

将制备并经测序验证的Apop-pMD18T质粒DNA用Nde I和BamH I双酶切，通过1％琼脂糖凝胶电泳分离酶切片段，采用胶回收试剂盒回收目标片段DNA。

2.载体的准备

将构建并扩增制备的C-pET28a质粒DNA同样也用Nde I和BamH I双酶切，通过1％琼脂糖凝胶电泳分离酶切片段，采用胶回收试剂盒回收质粒DNA。

3.重组表达质粒ApopC-pET28a的构建

将回收的凋亡素插入片段DNA和C-pET28a质粒DNA连接，转化E.coli BL21(DE3)菌株，37℃培养，回收质粒DNA，测序验证。

4.表达质粒构建过程示意图见图5。

5.重组菌菌落PCR检测1.5％琼脂糖电泳图谱见图6。图中，1为以pET28a空载质粒DNA为模板的阴性对照；2为构建的ApopC-pET28aPCR检测的结果，采用的引物为引物P3和引物P2，片段大小约为500bp；M为标准分子量DNA Marker。

实施例4：

凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白的表达和纯化

1.将带有ApopC-pET28a的E.coli BL21(DE3)重组工程菌在含卡那霉素的LB固体平皿上培养，挑取单克隆，在37℃采用含卡那霉素50ug/ml的LB培养基进行过夜培养。然后以此培养液按1％接种量转接新的含卡那霉素50ug/ml的LB培养基37℃培养至OD₆₀₀＝0.3-0.6，加入终浓度为0.5-3mM的IPTG进行诱导，于37℃继续培养3-5小时，收集菌体，超声波破碎，离心收集包涵体。

2.诱导表达的菌体经超声波破碎，进行15％SDS-PAGE电泳分析，见图7。图中，1为诱导前菌体破碎上清液；2，3，4，5，6分别为诱导后1，2，3，4，5小时的菌体破碎上清液；7，8为诱导后4，5小时菌体破碎沉淀部分；M为标准分子量蛋白质。

3.将经洗涤纯化的融合蛋白包涵体用8M尿素溶液溶解1-2hr，离心去除沉淀。调节pH至7.4-9.0，加入镍亲和层析凝胶进行柱外吸附1-2hr。吸附完毕后，将凝胶装入玻璃层析柱中经洗涤后用20-500mM咪唑分段洗脱，收集纯化的重组凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白(Apoptin-EC-SOD-PTD)。

4.洗脱的目标蛋白SDS-PAGE电泳分析结果见图7。图中，1为上样液，2为穿出液，3、4、5、6为20mM咪唑洗脱分段收集液，M为标准分子量蛋白质，7、8、9为100mM咪唑洗脱分段收集液，10、11、12为500mM咪唑洗脱分段收集液。

实施例5：

凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白对体外培养的肿瘤细胞的诱导凋亡作用。

1.将HeLa细胞在96孔细胞培养板中于37℃培养至细胞密度达到60％左右。将表达后分离纯化得到的重组Apoptin-EC-SOD-PTD经多次透析去除咪唑。然后进行无菌过滤，加入不同体积的DMEM细胞培养基稀释成不同蛋白浓度，从最高蛋白浓度起，逐步对半降低浓度，至蛋白浓度为零，以此作为阴性对照，每组蛋白浓度取3-4个孔作为平行对照。同时，将采用类似的方法由原核表达系统表达后分离纯化的重组Apoptin蛋白作为对照样品进行相同的实验操作。两组样品都在培养24小时后，吸取培养基，加入100μl含有5ug/ml MTT的DMEM，37℃孵育4小时，吸去培养基，加入100μl DMSO溶解紫色结晶，37℃孵育10分钟，于酶标仪490nm测定吸光值。在重组Apoptin-EC-SOD-PTD浓度在100μg/ml时，HeLa细胞的存活率为47％(IC₅₀＝105μg/ml)。而同样情况下，作为对照组的重组Apoptin(100μg/ml)和空白对照的缓冲液对HeLa细胞生长影响不明显。

2.采用重组Apoptin-EC-SOD-PTD及重组Apoptin对培养的HeLa细胞诱导凋亡处理的结果见图8。以MTT法检测经不同浓度样品处理后的HeLa细胞存活率。

实施例6：

凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白对体外培养的正常动物细胞的影响。

采用MTT法测定重组Apoptin-EC-SOD-PTD对体外培养的正常人体肝细胞L02的IC₅₀值，观察给药剂量与药物细胞毒性的关系。

1.将正常人肝细胞L02以RPMI 1640培养基(含10％胎牛血清)培养。用胰酶消化后，以1640培养液配成单细胞悬液，按1×10⁵/ml细胞浓度接种到96孔细胞培养板中，每孔体积100μl。37℃，5％CO₂培养箱中培养4h。

2.用培养液以终浓度分别为200、100、50、25、0μg/ml配制试验药物，每孔100μl，每组设3个平行孔，置37℃，5％CO₂及饱和湿度的培养箱继续培养48h。

3.在每个培养孔中加入MTT溶液进行检测，采用酶标仪比色法测定、计算细胞的存活率。试验数据以平均值±标准偏差表示。

4.凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白对体外培养的正常动物细胞的毒性影响见图9。表明，重组Apoptin-EC-SOD-PTD对体外培养的人正常肝细胞无明显毒性影响。

实施例7：

凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白对小鼠腹水瘤动物模型的抑瘤作用。

采用C57BL/6小鼠Lewis肺癌模型验证重组Apoptin-EC-SOD-PTD对肿瘤的增殖抑制作用。实验设空白对照组，阳性对照组，重组Apoptin-EC-SOD-PTD试验组，重组多聚精氨酸-凋亡素试验组(Poly Arg-Apoptin)四个组别，每组8只动物。空白对照组在接种肿瘤后，以生理盐水腹腔注射。阳性对照组则以注射环磷酰胺溶液(20mg/kgBW/天)。试验组分别注射经纯化透析、无菌过滤的重组Apoptin-EC-SOD-PTD(10mg/kgBW/天)和重组PolyArg-Apoptin(40mg/kgBW/天)。

1.接瘤：在6周龄，体重约20g的C57BL/6(雄性)小鼠腋下接种0.2ml的Lewis肺癌细胞悬液，喂养3-4天后，观察小鼠腋下肿瘤生长情况。待注射部位的肿瘤长至直径数毫米大小时即可开始给药试验。

2.给药：采用腹腔注射的方式给药，连续给药7-8天。每天给药前进行体重测量。

3.抑瘤率测定：停止给药2天后，采用断颈法处死动物，将小鼠体内的肿瘤组织剥离，取出称重，计算抑瘤率。

抑瘤率＝(空白组平均瘤重-药物组平均瘤重)/空白组平均瘤重X100％

4.重组Apoptin-EC-SOD-PTD对Lewis肺癌的抑瘤率为37.8％，高于重组Ploy Arg-Apoptin组，与阳性对照组接近(阳性对照组抑瘤率为47.4％)。说明凋亡素在接有EC-SOD-PTD后，大大提高了其跨膜转运效果，对肿瘤细胞具有很好的抑制生长作用。凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白对实体瘤的抑制作用

本发明的范围不受所述具体实施方案的限制，所述实施方案只欲作为阐明本发明各个方面的单个例子，本发明范围内还包括功能等同的方法和组分。实际上，除了本文所述的内容外，本领域技术人员参照上文的描述和附图可以容易地掌握对本发明的多种改进。所述改进也落入所附权利要求书的范围之内。上文提及的每篇参考文献皆全文列入本文作为参考。

序列表

<110>浙江日升昌药业有限公司

<120>凋亡素-EC-SOD羧基末端蛋白转导域融合蛋白

<130>说明书序列表

<160>4

<170>PatentIn version 3.3

<210>1

<211>29

<212>PRT

<213>Homo sapiens

<400>1

Val Cys Gly Pro Gly Leu Trp Glu Arg Gln Ala Arg Glu His Ser Glu

1               5                   10                  15

Arg Lys Lys Arg Arg Arg Glu Ser Glu Cys Lys Ala Ala

            20                  25

<210>2

<211>121

<212>PRT

<213>Chicken anemia virus

<400>2

Met Asn Ala Leu Gln Glu Asp Thr Pro Pro Gly Pro Ser Thr Val Phe

1               5                   10                  15

Arg Pro Pro Thr Ser Ser Arg Pro Leu Glu Thr Pro His Cys Arg Glu

            20                  25                  30

Ile Arg Ile Gly Ile Ala Gly Ile Thr Ile Thr Leu Ser Leu Cys Gly

        35                  40                  45

Cys Ala Asn Ala Arg Ala Pro Thr Leu Arg Ser Ala Thr Ala Asp Asn

    50                  55                  60

Ser Glu Ser Thr Gly Phe Lys Asn Val Pro Asp Leu Arg Thr Asp Gln

65                  70                  75                  80

Pro Lys Pro Pro Ser Lys Lys Arg Ser Cys Asp Pro Ser Glu Tyr Arg

                85                  90                  95

Val Ser Glu Leu Lys Glu Ser Leu Ile Thr Thr Thr Pro Ser Arg Pro

            100                 105                 110

Arg Thr Ala Lys Arg Arg Ile Arg Leu

        115                 120

<210>3

<211>185

<212>PRT

<213>artificial sequence

<220>

<223>artificial sequence

<400>3

Met Gly Ser Ser His His His His His His Ser Ser Gly Leu Val Pro

1               5                   10                  15

Arg Gly Ser His Met Asn Ala Leu Gln Glu Asp Thr Pro Pro Gly Pro

            20                  25                  30

Ser Thr Val Phe Arg Pro Pro Thr Ser Ser Arg Pro Leu Glu Thr Pro

        35                  40                  45

His Cys Arg Glu Ile Arg Ile Gly Ile Ala Gly Ile Thr Ile Thr Leu

    50                  55                  60

Ser Leu Cys Gly Cys Ala Asn Ala Arg Ala Pro Thr Leu Arg Ser Ala

65                  70                  75                  80

Thr Ala Asp Asn Ser Glu Ser Thr Gly Phe Lys Asn Val Pro Asp Leu

                85                  90                  95

Arg Thr Asp Gln Pro Lys Pro Pro Ser Lys Lys Arg Ser Cys Asp Pro

            100                 105                 110

Ser Glu Tyr Arg Val Ser Glu Leu Lys Glu Ser Leu Ile Thr Thr Thr

        115                 120                 125

Pro Ser Arg Pro Arg Thr Ala Lys Arg Arg Ile Arg Leu Gly Ser Glu

    130                 135                 140

Phe Glu Leu Arg Arg Gln Ala Ser Ala Gly Gly Gly Gly Ser Gly Pro

145                 150                 155                 160

Gly Leu Trp Glu Arg Gln Ala Arg Glu His Ser Glu Arg Lys Lys Arg

                165                 170                 175

Arg Arg Glu Ser Glu Cys Lys Ala Ala

            180                 185

<210>4

<211>555

<212>DNA

<213>artificial sequence

<220>

<223>artificial sequence

<400>4

atgggcagca gccatcatca tcatcatcac agcagcggcc tggtgccgcg cggcagccat     60

atgaacgctc tccaagaaga tactccaccc ggaccatcaa cggtgttcag gccaccaaca    120

agttcacggc cgttggaaac ccctcactgc agagagatcc ggattggtat cgctggaatt    180

acaatcactc tatcgctgtg tggctgcgcg aatgctcgcg ctcccacgct aagatctgca    240

actgcggaca attcagaaag cactggtttc aagaatgtgc cggacttgag gaccgatcaa    300

cccaagcctc cctcgaagaa gcgatcctgc gacccctccg agtacagggt aagcgagcta    360

aaagaaagct tgattaccac tactcccagc cgaccccgaa ccgcaaaaag gcgtataaga    420

ctgggatccg aattcgagct ccgtcgacaa gcttccgctg gaggcggtgg aagcgggccc    480

gggctctggg agcgccaggc gcgggagcac tcagagcgca agaagcggcg gcgcgagagc    540

gagtgcaagg ccgcc                                                     555