公开/公告号CN102718860A
专利类型发明专利
公开/公告日2012-10-10
原文格式PDF
申请/专利权人 武汉伊艾博科技有限公司;
申请/专利号CN201210151454.X
申请日2012-05-16
分类号C07K14/765;C07K14/77;C07K14/795;C07K1/113;G01N21/33;
代理机构武汉开元知识产权代理有限公司;
代理人涂洁
地址 430074 湖北省武汉市东湖开发区关东园路2-2号光谷国际商会大厦1栋A座17层10号
入库时间 2023-12-18 06:47:36
法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2014-12-31
授权
授权
2012-12-05
实质审查的生效 IPC(主分类):C07K14/765 申请日:20120516
实质审查的生效
2012-10-10
公开
公开
技术领域
本发明属于免疫学技术领域,具体的是说一种去甲肾上腺素(以下简 称NE)完全抗原的制备方法以及测定去甲肾上腺素完全抗原中NE与载 体的偶联摩尔比的方法。
技术背景
去甲肾上腺素(Norepinephrine,也称Noradrenaline,缩写NE或NA) ,旧称“正肾上腺素”,学名1-(3,4-二羟苯基)-2-氨基乙醇,是肾上 腺素去掉 N-甲基后形成的物质,在化学结构上也属于儿茶酚胺。它 既是一种神经递质,主要由交感节后神经元和脑内肾上腺素能神经末 梢合成和分泌,是后者释放的主要递质;也是一种激素,由肾上腺髓质 合成和分泌,但含量较少。
多巴、多巴胺、肾上腺素与去甲肾上腺素等统称为儿茶酚胺类物质, 它们都是由酪氨酸衍生而来的系列物。儿茶酚胺作为神经递质和激素 ,与人们的健康与疾病有密切关系,它们不仅直接参与行为活动以及 参与血压、心率、呼吸和睡眠等植物神经功能的调控,而且还与一些 功能性疾病如神经分裂症、忧郁症以及器质性病变的出现有关。血浆 及尿中儿茶酚胺的浓度水平可用于诊断高血压、嗜铬细胞瘤及成神经 细胞瘤等病症,因而准确测定人体生物样品中儿茶酚胺类物质代谢浓度 的变化,在疾病的诊断和治疗中具有重要的意义。目前,人体液和组织 中儿茶酚胺类物质的不同分析方法,包括高效液相色谱法、毛细管电泳 法、质谱法、电化学法、化学发光法、荧光光度法等。
NE的免疫学检测方法不仅方法简便,成本低廉,不需要高精密的仪器 ,而且检测的灵敏度都不亚于高效液相色谱法;但建立高效免疫学检 测方法的关键是需要高品质的抗体,高品质抗体的前提是制备免疫原 型较强的完全抗原,而众所周知,NE是小分子结构,激发不 了动物机体产生抗体,因此,研究人员需要提供一种简单可靠的方法 ,以获得一种能够高效激发动物机体产生抗体的完全抗原。
发明内容
本发明的目的是为了解决上述技术问题,提供一种制备方法简单、生 产周期短,生产成本低的用于NE的免疫学检测方法的免疫原型强的完 全抗原。
技术方案包括下述步骤,
(1)将NE与载体分别溶于NaAc溶液中,分别制备NE溶液及载体溶液, 然后将两者混合后加入甲醛溶液并调节pH值在6.0-6.5(优选6)之间 ,4℃持续搅拌下进行偶联反应20-28小时(优选24小时),得到反应 混合液。
(2)反应混合液通过超滤、透析或者脱盐柱法除去反应混合液中未偶 联上的小分子物质,缓冲液采用pH为7.2的0.01M磷酸盐缓冲液(PBS) ,得到偶联物。
(3)按照步骤(1)和步骤(2)的方法,反应体系缺失NE,维持其他 各反应条件不变的条件下,制得载体mannich对照。
(4)采用紫外分光光度计对载体、载体mannich对照、NE标准品及偶 联物在200-500nm之间进行扫描,在同坐标上进行图形比对,在偶联物 与载体mannich对照蛋白浓度相同的情况下,如果偶联物比载体manni ch对照多出特征吸收峰,则判定偶联成功,即得到NE完全抗原。
所述步骤(1)中,所述载体为含有游离氨基的生物大分子,具体为牛 血清白蛋白或卵清白蛋白或血蓝蛋白。
所述步骤(1)中,将NE与载体分别溶于1.2mol/L NaAc溶液中,分别 制备34mmoL/L NE溶液和3.4mmoL/L载体溶液,按照NE与载体摩尔比1 0-20:1(优选10:1)的比例,将NE溶液缓慢加入到载体溶液中,缓 慢滴加,边滴加边搅拌,混匀后制成混合溶液,然后在搅 拌下缓慢滴加与混合溶液等体积的体积浓度为3%甲醛溶液,滴加完以 后,用1.2mol/L NaAc溶液调节pH值在6.0-6.5之间,4℃持续搅拌, 反应20-28小时,得到反应混合液。
所述将NE溶液缓慢加入到载体溶液中,滴加速度为1-2毫升/分,边滴 加边搅拌,搅拌速度为100-150转/分。
所述在搅拌下缓慢滴加与混合溶液等体积的体积浓度为3%甲醛溶液, 搅拌速度为100-150转/分,滴加速度为1-2毫升/分。
通过摩尔消光系数法计算NE完全抗原中NE与蛋白载体的偶联摩尔比, 首先,采用紫外分光光度扫描得到NE完全抗原在200-500nm之间两个特 征吸收峰为λ1和λ2,其中λ1为载体的特征吸收峰,λ2为NE完全抗 原特有的吸收峰,公式如下:
[A NE完全抗原λ1/ ?NEλ2]/[( ANE完全抗原λ1- ANE完全抗原λ2×?NEλ1/ ?NEλ2)/ ?载体λ1]
其中,
ANE完全抗原λ2:NE完全抗原在λ2的吸光度;
ANE完全抗原λ1:NE完全抗原在λ1的吸光度;
?NEλ2:NE在λ2处的摩尔消光系数;
?NEλ1:NE在λ1处的摩尔消光系数;
?载体λ2:载体在λ2处的摩尔消光系数;
?载体λ1:载体在λ1处的摩尔消光系数。
mannich法的原理是含有α-活泼氢的醛、酮与甲醛及胺(伯胺、仲胺或 氨)反应,结果一个α-活泼氢被胺甲基取代,此反应又称为胺甲基化 反应,所得产物称为Mannich碱(见图1)。发明人依据mannich法的原理 和NE的结构特征,运用mannich法将NE与载体偶联,制备完全抗原(图 2)。基于上述原理,进一步的,为了达到高效偶联,发明人对NE与载 体的偶联工艺进行了设计,NE与载体摩尔比控制在10-20:1为好,过高 则干扰偶联反应的动态平衡,后期去除也比较困 难,过低则影响偶联效果和偶联的摩尔比;并且NE溶液和载体溶液的 混合过程以缓慢滴加并配合搅拌的方式为好,这样可以避免反应物聚 集沉淀问题的发生,同理,在NE溶液和载体溶液混合后,再在搅拌下 缓慢滴加甲醛溶液,是为了防止三者同时混合而出现的局部反应不均 匀的 ,造成反应产物聚集沉淀的 问题。所述偶联反应应该在 低温下进行,优选为4℃,且应该保持搅拌速度在100-150转/分。
通过控制上述偶联反应的工艺条件,并且再经过超滤、透析或者脱盐 柱法除去反应混合液中未偶联上的小分子物质(如未偶联上的NE、甲 醛、NaAc等小分子物质),从而达到纯化偶联物的目的,可以得到高 纯度、高品质完全抗原,从而达到高效激发动物机体产生抗体的目的 。所述超滤、透析或者脱盐柱法均为现有技术,具体方法可参见所使 用具体产品的操作手册。
紫外分光光度计能够快速准确的判定偶联是否成功,但出于希望制备 高品质的完全抗原考虑,希望NE与载体的偶联比尽可能的高,此时就 需要一种能够测定偶联物中NE与载体的偶联比的方法,发明人特别采 用摩尔消光系数法计算NE与蛋白载体的偶联摩尔比,通过预先获得λ 1和λ2,再带入公式计算,即可得到偶联摩尔比。
有益效果:
(1)本发明方法制备完全抗原步骤简单、方法易于操作,解决了小分 子结构的NE难以制备完全抗原,无法激发动物机体产生抗体的问题。
(2)由本发明方法制备得到的完全抗原品质高(偶联物的偶联尔摩尔 比可达 4:1以上),免疫动物后从而激发动物产生高品质的抗体。
(3)可以明确鉴定完全抗原合成是否成功,并精确计算小分子与载体 的偶联比,便于制备高品质抗体过程中的质量控制。
附图说明
图1.Mannich反应原理示意图;
图2.载体与去甲肾上腺素(NE)偶联示意图;
图3.分光光度计连续波长扫描载体牛血清白蛋白(以下简称BSA)、BSA mannich对照、NE和NE完全抗原1(BSA-NE)在200-500nm之间吸收 峰图;
图4.分光光度计连续波长扫描载体卵清蛋白(以下简称OVA)、OVA ma nnich对照、NE和NE完全抗原2(OVA-NE)在200-500nm之间吸收峰图 。
具体实施方式
实施例1:
1 NE与载体BSA偶联
将NE与载体BSA分别溶于1.2mol/L NaAc溶液中,分别制备34mmoL/L去 NE溶液和3.4mmol/L载体溶液,按照NE与载体摩尔比10-20:1的比例, 将NE溶液缓慢加入到载体溶液中,缓慢滴加,边滴加边搅拌(滴加速 度1-2毫升/分,100-150转/分),混匀后制成混合溶液,然后在搅拌下 缓慢滴加(滴加速度1-2毫升/分,100-150转/分)与混合溶液等体积的 体积浓度为3%甲醛溶液,滴加完以后,用1.2mol/L NaAc溶液调节pH 值在6.0-6.5之间,4℃持续搅拌,反应20-28小时,得到反应混合液 。
2 反应混合液的超滤纯化过程
将反应混合液置于Amicon Ultra-4超滤管,以7500g离心力离心10mi n,离心完毕后补加0.01M PBS(pH7.2)至原体积对截留物进行 稀释洗涤,重复以上步骤 7次,最后对所得溶液稀释分装,经冷冻干 燥,即得到偶联物1。
3 BSA mannich对照的制备
按照步骤1和2的方法,反应体系缺失NE,维持其他各反应条件不变的 条件下,制备载体mannich对照,即BSA mannich对照。
4 偶联物1通过分光光度计扫描鉴定
将偶联物1、NE、BSA mannich对照和载体 BSA调整到相同的浓度( 1mg/mL),通过200-500nm波长扫描,并在同一坐标绘制曲线图(如图 3)
NE在343nm处有最高吸收峰,载体BSA最高吸收峰在278nm。偶联后的偶 联物1在250nm-450nm范围内有两个紫外特征峰,即λ1=279nm,λ2=4 02nm。其中λ1=279nm为蛋白质的紫外特征吸收峰,即BSA的特征吸收 峰;在偶联物1上没有NE的343nm吸收峰,由于反应过程中NE偶联上蛋 白质后导致其结构的变化使其最大吸收峰偏移至402nm。由以上分析可 知,合成后的溶液体系并不是载体BSA和NE的简单叠加。通过BSA ma nnich对照和BSA峰形的比较,表明在缺失NE的情况下,BSA mannich 对照与BSA吸收峰没有差别,而偶联物1与BSA的峰形差异较大,从而确 证了NE完全抗原1(BSA-NE)制备成功。
NE完全抗原1中 NE与BSA偶联比的计算
参见图3,结果显示, NE完全抗原1在可见光区有明显两个吸收峰( 279nm和402nm)出现,其中279nm为载体BSA的特征吸收峰,与NE的最 大吸收峰(343nm)相比,NE完全抗原1特有的一个最大吸收峰为402n m。根据可见分光光度法,按以下公式,可以计算出 NE完全抗原1中NE与BSA蛋白的偶联比。
公式:
[ANE完全抗原1 402nm/ ?NE 402nm]/[( A NE完全抗原1 279nm- A NE完全抗原1 402nm×?NE 279nm/ ?NE 402nm)/ ?BSA 279nm]
A NE完全抗原1 402nm: NE完全抗原1在402nm的吸光度;
ANE完全抗原1 279nm: NE完全抗原1在279nm的吸光度;
?NE 402nm:NE在402nm处的摩尔消光系数;
?NE 279nm:NE在279nm处的摩尔消光系数;
?BSA 402nm:载体BSA在402nm处的摩尔消光系数;
?BSA 279nm:载体BSA在279nm处的摩尔消光系数。
经过计算, NE完全抗原1中NE与载体BSA的偶联比为4.35:1。
实施例2
与实施例1不同的是,所述载体采用卵清蛋白(以下简称OVA);所述 步骤(2)中采用对反应混合液进行透析纯化,其方法为:将反应混合 液装入截留为14,000Da的透析袋,封闭袋口,放入0.01M PBS(pH7. 2)溶液中在磁力搅拌器上4℃搅拌,100转/分,每隔3小时,更换0.0 1M PBS(pH7.2)溶液一次,更换5次以后取出透析袋中溶液得到偶联 物2。其余同实施例1。
经分光光度计扫描鉴定同样确证了NE完全抗原2(OVA-NE)制备成功。
NE完全抗原2中NE与OVA偶联比的计算
参见图4,结果显示, NE完全抗原2在可见光区有明显的两个吸收峰 (279nm和402nm)出现,其中279nm为载体的特征吸收峰, NE的最大吸 收峰(343nm)偶联后有偏移现象,偏移至最大吸收峰个 (402nm)。根据可见分光光度法,按以下公式,可以计算出NE完全抗 原2中NE与OVA蛋白的偶联比。
公式:
[ANE完全抗原2 402nm/ ?NE 402nm]/[( ANE完全抗原2 279nm- A NE完全抗原2 402nm×?NE 279nm/ ?NE 402nm)/ ?OVA 279nm]
ANE完全抗原2 402nm: NE完全抗原2在402nm的吸光度;
ANE完全抗原2 279nm: NE完全抗原2在279nm的吸光度;
?NE 402nm:NE在402nm处的摩尔消光系数;
?NE 279nm:NE在279nm处的摩尔消光系数;
?OVA 402nm:载体OVA在402nm处的摩尔消光系数;
?OVA 279nm:载体OVA在279nm处的摩尔消光系数。
经过计算, NE完全抗原2中NE与载体OVA的偶联比为4.85:1。
机译: 方形染料偶联物,其制备方法及其在测定方法和试剂盒中的用途
机译: 方形染料偶联物,其制备方法及其在测定方法和试剂盒中的用途
机译: 方形染料偶联物,其制备方法及其在测定方法和试剂盒中的用途